Prinzipien und Arbeitsablauf der gesamten Exom-Sequenzierung

Was ist WES?

Das Exom wird allgemein definiert als die Gesamtheit aller Exons innerhalb von protein-codierenden Genen, einschließlich Elemente, die nicht protein-codierend sind, wie Sequenzen von Mikro-RNA oder lncRNA. Die Untersuchung des Exoms hilft bei der Identifizierung von Loci, die spezifische Krankheiten auslösen können. Bei der Untersuchung seltener mendelscher Erkrankungen erweist sich die Exom-Sequenzierung als besonders effiziente Methode zur Erkennung genetischer Variationen.

Beschleunigt durch Fortschritte in gezielte Anreicherung Strategien und Durchbrüche in der DNA-Sequenzierungstechnologie, die Evolution von Whole-Exom-Sequenzierung (WES) war entscheidend. WES steht für eine genomische Analysetechnik, die auf die detaillierte Untersuchung aller transkribierbaren Exons innerhalb eines Genoms abzielt. Dies wird erreicht, indem DNA genutzt wird. Mikroarray oder Whole-Genome-Sequenzierung Plattformen in Kombination mit Sequenzfangtechnologien. Diese Werkzeuge ermöglichen die selektive Erfassung und Anreicherung von Exonregionen in der DNA, die anschließend einer Hochdurchsatz-Sequenzierung unterzogen werden, um Einblicke in die regulatorischen Mechanismen der Genexpression zu erhalten.

WES zeigt die Fähigkeit, potenzielle Mutationen zu erkennen, die mit Phänotypen oder Krankheiten assoziiert sein können, sowie allgemeine genomische Variationen, die Entdeckung neuer Gene und die Beziehungen zwischen Phänotyp und Genotyp. Genmutationen.

Unterschied zwischen WES und WGS

WES umfasst die Extraktion aller exons, der primären Bereiche, die die Proteinsynthese steuern. Proteine bilden den strukturellen und funktionalen Kern des menschlichen Körpers, wodurch die Exomzonen innerhalb der DNA den größten genetischen Wert haben. Da Exons lediglich 1 % des Genoms eines Individuums ausmachen, gelingt es WES, die Kosten zu kontrollieren und gleichzeitig die Testtiefe zu erhöhen – ein entscheidender Faktor für die Genauigkeit. Bedeutende akademische Forschungsergebnisse konzentrieren sich derzeit auf die exons, sodass die aus WES generierten Daten ausreichend substantiell für zukünftige Aktualisierungen sind. Mit dem Auftreten neuer Forschungsergebnisse kann eine direkte Datenanalyse durchgeführt werden, ohne dass ein erneuter Test erforderlich ist.

Whole Genome Sequenzierung (WGS) bemüht sich, alle genetischen Loci zu erfassen. Bereiche jenseits der Exons, die 99 % der gesamten Loci ausmachen, enthalten reichlich repetitive und sinnlose Segmente. Der Ertrag an relevanter wissenschaftlicher Literatur ist ebenfalls auffallend gering, was darauf hindeutet, dass der lesbare Inhalt, der aus WGS gewonnen wird, nahezu ununterscheidbar von dem aus WES extrahierten Inhalt ist. Dennoch werden erhebliche Kosten unverhältnismäßig für 'sinnlose' Loci in WGS verschwendet, was es schwierig macht, eine angemessene Sequenzierungstiefe zu garantieren. Bei bestimmten WGS-Genetests, die mehrere Tausend kosten, beträgt die durchschnittliche Tiefe lediglich 30X. Für die analysierten Loci könnte die Sequenzierungstiefe auf einstellige Werte sinken, was die Daten praktisch wertlos für Referenzzwecke macht.

Im Vergleich zu WGS bietet WES einen Vorteil in den folgenden drei Aspekten:

  • Die WES benötigt weniger Zeit als die WGS.
  • Die von WES erzeugten Datensätze sind erheblich kleiner als die von WGS, was sie für bioinformatische Analysen handhabbarer macht.
  • Kosten: Die Kosten für WGS sind drei- bis viermal so hoch wie die für WES.

Daher wird WES derzeit als die kosteneffektivste Gen-Testtechnik angesehen.

Prinzip der Exom-Sequenzierung

Whole Exome Sequenzierung als eine genomische Analysetechnik, die genetische Mutationen sucht, die mit Variationen der Proteinfunktion verbunden sind. Das grundlegende Prinzip umfasst:

DNA-Erfassung und -Anreicherung: DNA- oder RNA-Sonden, die spezifisch für Exonregionen sind, werden zunächst verwendet, um DNA-Sequenzen zu erfassen und anzureichern. Typischerweise wird dies durch die Hybridisierungstechnologie in Flüssigphase erreicht, die die Prinzipien der Basenpaarung nutzt, um biotinmarkierte RNA-Sonden mit DNA-Bibliotheken mit Adaptersequenzen zu hybridisieren und dann die DNA des Zielbereichs durch Bindung an magnetische Perlen anzureichern.

Hochdurchsatz-Sequenzierung: Die angereicherten DNA-Sequenzen werden dann mittels Hochdurchsatz-Sequenzierungstechnologie sequenziert. Sequenzierung ist der Prozess, bei dem alle Desoxyribonukleotid-Anordnungen im Exom entdeckt werden, was uns helfen kann, potenzielle pathophysiologische Veränderungen bei bestimmten Krankheiten zu verstehen.

Datenanalyse: Die Sequenzierungsergebnisse werden einer bioinformatischen Analyse unterzogen, um genetische Mutationen zu identifizieren, die mit Variationen der Proteinfunktion verbunden sind.

Allgemeiner Arbeitsablauf der Exom-Sequenzierung

Der konventionelle Arbeitsprozess von Whole Exome Sequenzierung (WES) umfasst die Probenvorbereitung, das Exom-Capturing und das Bibliotheksdesign, Zielanreicherung, Sequenzierung und bioinformatische Analyse. Eine Abbildung, die den WES-Workflow veranschaulicht, kann unten dargestellt werden.

Figure1. Workflow of WGS.Abbildung 1. Workflow der WGS.

Hinweis: Die genauen Protokolle variieren je nach Art der Proben, Reagenz-Kits und Sequenziergeräten. Forscher sollten die Anweisungen befolgen, die für die verwendeten Reagenzien, Kits und Sequenziermaschinen angegeben sind.

Probenvorbereitung: Vollblutproben, periphere Blutmononukleäre Zellen (PBMCs), frisch gefrorene Gewebe, formalinfixierte, paraffineingebettete (FFPE) Proben, Plasma-Proben und Amnionflüssigkeitszellen können unter anderem für die Exom-Sequenzierung verwendet werden. DNA wird aus den biologischen Proben, die getestet werden sollen, extrahiert und durch physikalische Methoden oder enzymatische Prozesse fragmentiert. Physikalische Zerstörung umfasst Scherung, Sonikation und fluiddynamische Scherung, wobei Scherung und Sonikation als die primären Methoden der DNA-Fragmentierung dienen. Enzymatische Prozesse beinhalten typischerweise den Einsatz von Nukleasen oder Transposasen, die die DNA in kleinere Stücke fragmentieren. Nukleasen führen zur Spaltung der Phosphodiesterbindungen innerhalb der Nukleinsäuren, was zu einer Fragmentierung der DNA führt.

Erfassung und Anreicherung von Exons: Während der Exom-Erfassung und -Anreicherung werden Exons selektiv mithilfe von Exom-Erfassungstechnologie angereichert. Das grundlegende Konzept hinter der Zielanreicherung besteht darin, die physikochemischen Unterschiede zwischen der Zielverbindung und anderen Substanzen auszunutzen, um deren Trennung zu erleichtern. Nach der Isolation des Exoms vom Rest des Genoms sind mehrere Waschschritte erforderlich, um ein reineres Exom zu erhalten. Obwohl in der Regel destilliertes Wasser verwendet wird, um die Ziele zu eluieren, können bestimmte spezialisierte Kits spezifische Elutionslösungen erfordern.

Bibliothekskonstruktion: Die Bibliothekskonstruktion umfasst die Reparatur der Enden der angereicherten exonspezifischen DNA-Fragmente, das Anbringen von Verbindungsstücken und die Amplifikation der Bibliotheken, um die angereicherten exonspezifischen DNA-Fragmente in Sequenzierungsbibliotheken umzuwandeln – ein Schritt, der reichlich DNA-Vorlagen für die anschließende Sequenzierung bereitstellt.

Tabelle 1. Häufige Kits zur Zielanreicherung für die Sequenzierung.

Kits Zielregion Genomisches DNA-Eingang erforderlich Adapter-Erweiterung Sondenlänge (mer)
Agilent SureSelect XT2 V6 Exom 60 MB 100 ng Ligation 120
Agilent SureSelect XT2 V5 Exom 51 MB 100 ng Ligatur 120
IDT xGEN Exom-Panel 39 MB 500 ng Ligatur nicht beschrieben
Illumina Nextera Rapid Capture Expanded Exom 62 MB 50 ng Transposase 95
Roche NimblegenSeqCap EZ Exom v3.0 64 MB 1 µg Ligatur 60 - 90

Sequenzierung: Mit den Fortschritten in den Sequenzierungstechniken wird die Next-Generation Sequencing (NGS) umfassender für die Exom-Sequenzierung eingesetzt. Der Grundgedanke hinter NGS besteht darin, die Exomprobe mit einer geeigneten Basis (wie einem Flowcell bei Illumina Hiseq und magnetischen Perlen bei Roche-454) zu koppeln, gefolgt von einer in situ PCR-Duplikation, um eine Signalverstärkung in jeder Runde sicherzustellen. Die ddNTPs werden nach jeder Erweiterungsrunde untersucht, und die vollständige Sequenz wird schließlich mit einem bioinformatischen Algorithmus zusammengestellt. Die hohe Effizienz und Durchsatzkapazität machen NGS zu einer attraktiven Option für die Hochdurchsatz-Sequenzierung.

Abgesehen von NGS entwickeln sich die Sequenzierungstechnologien der dritten Generation schnell weiter und weisen Effizienzen auf, die NGS bei weitem übertreffen. Die Einzelmolekülsequenzierung, ein charakteristisches Merkmal der Sequenzierung der dritten Generation, kann die Zeit und die Kosten, die mit der gesamten Genomsequenzierung verbunden sind, auf nur wenige Minuten reduzieren. Unternehmen wie PacificBio und Oxford Nanopore haben die Effizienz ihrer Methoden demonstriert, die potenziell eine Revolution im Bereich der Exomsequenzierung auslösen könnten.

Tabelle 2. Häufig verwendete Methoden für das Sequenzieren heutzutage.

Methoden Unternehmen Generation Leseumfang Genauigkeit Lesevorgänge pro Durchlauf Zeit pro Lauf
Ion-Halbleiter Ion Torrent 2. Generation Bis zu 600 bp 99,60 % bis zu 80 Millionen 2 Stunden
Pyrosequenzierung (454) Roche 2. Generation 700 bp 99,90% 1 Million 24 Stunden
Sequenzierung durch Synthese Illumina 2. Generation 75-300 bp 99,90 % 1 Million bis 3 Milliarden 1 bis 11 Tage
Sequenzierung durch Ligation (SOLiD) ABI 2. Generation 50+35 oder 50+50 bp 99,90 % 1,2 bis 1,4 Milliarden 1 bis 2 Wochen
Nanoporen-Sequenzierung Oxford Nanopore Technologien 3. Generation bis zu 500 KB 92–97 % (Einzel-Lesevorgang)* abhängig von der vom Benutzer ausgewählten Leselänge 1 Minute bis 48 Stunden
Einzelmolekül-Echtzeit-Sequenzierung Pacific Biosciences 3. Generation 30.000 bp 87 % (einmalige Lesung)* 10-20 Milliarden 0,5-20 Stunden

Datenanalyse: Der Datenanalyseprozess umfasst die Eliminierung von qualitativ minderwertigen Reads während der Sequenzierung durch Qualitätskontrolle, das Ausrichten von hochwertigen Reads mit dem Referenzgenom, die Quantifizierung von Einzel-Nukleotid-Polymorphismen (SNPs), Insertionen und Deletionen (Indels) sowie von Kopienzahlvariationen (CNVs), gefolgt von Annotation, Screening, Analyse und Validierung. Die Datenanalyse stellt einen kritischen Punkt in der Exom-Sequenzierung dar und umfasst die Bewertung und Verarbeitung der Sequenzierungsdatenqualität, das Ausrichten der Sequenzierungsreads an das Referenzgenom und die Identifizierung genetischer Mutationen innerhalb der Proben. Die erkannten genetischen Mutationen müssen annotiert werden, einschließlich der Erkennung der Funktion der Mutation, ihrer pathologischen Bedeutung und ihrer potenziellen Auswirkungen.

Figure2. The typical variant calling pipeline.Abbildung 2. Die typische Pipeline zur Variantenbestimmung.

Vorteile der Exom-Sequenzierung

Kosten-Nutzen-Verhältnis: Im Vergleich zu Whole Genome Sequenzierung, Whole Exome Sequencing bietet eine tiefere Abdeckung, größere Genauigkeit und ist wirtschaftlich effizienter.

Hohe Sequenzierungstiefe: Die Sequenzierungstiefe kann mehr als 120x erreichen.

Hohe Durchsatzrate: Es erfüllt die Forschungsbedürfnisse mehrerer Zielregionen aus einer großen Anzahl von Proben.

Hohe Genauigkeit: Mit einer tiefen Sequenzierungsabdeckung ist die Datengenauigkeit hoch und effizient.

Anwendung der Exom-Sequenzierung

Whole-Exom-Sequenzierung (WES) findet Anwendung in verschiedenen Bereichen der biomedizinischen Forschung, einschließlich der Untersuchung von monogenen erbliche Krankheitenkomplexe Krankheiten, somatische Mutationen in Tumoren, Entdeckung von Onkogenen und Tumorsuppressorgenen sowie Fortschritte bei Initiativen zur personalisierten Medizin.

Tumoren, die komplexe Krankheiten sind, die durch multiple Genmutationen ausgelöst werden, können effektiv mit Hilfe von verstanden werden. Whole-Exom-SequenzierungEs ermöglicht Wissenschaftlern und Klinikern, Variationen in tumorbezogenen Genen aufzudecken, um eine genaue Diagnose und Prognose des Tumors zu erreichen. Dies umfasst hauptsächlich die Forschung zu Treibergen, molekularer Subtypisierung von Tumoren, Forschung zu wiederkehrenden Metastasen und maßgeschneiderte Medikamente für individuelle Tumoren.

Genetische Störungen entstehen häufig aus Genmutationen, die oft in den exonspezifischen Regionen auftreten, die Proteine kodieren. Traditionelle Methoden zur Mutationsdetektion erfordern eine gründliche Untersuchung der krankheitsrelevanten Gene einzeln, was zeitaufwendig, arbeitsintensiv ist und eine erhebliche Stichprobengröße erfordert. Exom-Sequenzierung mildert jedoch diese Nachteile, indem sie gleichzeitig mehrere Krankheitsgene untersucht, was zu einer erheblich verbesserten Detektionseffizienz und Genauigkeit führt. Durch die Anwendung von WES können wir alle exonspezifischen Regionen sequenzieren, die erforderlich sind, um Proteine zu kodieren, und anschließend Genmutationen oder polymorphe Loci identifizieren, die mit dem Krankheitsausbruch in Verbindung stehen. Dies erleichtert die genaue Diagnose und Behandlung genetischer Störungen.

Figure3. WES and impact of its genetic consequences on human public health.Abbildung 3. WES und die Auswirkungen seiner genetischen Konsequenzen auf die öffentliche Gesundheit des Menschen. (Rabbani B et al., 2014)

WES weckt erhebliches Interesse für klinische Anwendungen, hauptsächlich weil es die handlungsrelevanten Bereiche innerhalb eines Genoms umfasst. Das Hauptziel besteht darin, Variationen in den exonen Regionen zu identifizieren und die ursächlichen Mutationen für Krankheiten oder pathogene Varianten zu bestimmen. Die Schnittstelle zwischen Big-Data-Analyse und WES treibt Fortschritte in der personalisierten Medizin in zahlreichen Dimensionen voran.

Wenn Sie an unseren Genomik-Dienstleistungen interessiert sind, zögern Sie bitte nicht, unsere Wissenschaftler zu kontaktieren. Wir helfen Ihnen gerne weiter. Neben Genomsequenzierung, bieten wir auch Dienstleistungen an, die folgendes umfassen Transkriptomik, Epigenomik, mikrobielle Genomik, und PacBio SMRT-Sequenzierung.

Referenzen:

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Nur für Forschungszwecke, nicht zur klinischen Diagnose, Behandlung oder individuellen Gesundheitsbewertung bestimmt.
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