Kleine RNA-Sequenzierung

Um das wachsende Forschungsinteresse an kleinen RNAs zu unterstützen, bietet CD Genomics einen qualifizierten Dienst für die Sequenzierung kleiner RNAs an, der die Entdeckung neuer kleiner RNAs, die Charakterisierung von Mutationen und das Expressionsprofiling kleiner RNAs durch den Einsatz fortschrittlicher Technologien abdeckt. NGS-Technologien und Datenanalyse-Pipeline.

Die Einführung der kleinen RNA-Sequenzierung

Kleine RNA-Spezies umfassen in der Regel die häufigsten und am besten untersuchten. mikroRNA (miRNA)kleine interferierende RNA (siRNA) und piwi-interagierende RNA (piRNA) sowie andere Arten von kleinen RNAs, wie kleine nukleolare RNA (snoRNA) und kleine nukleäre RNA (snRNA). Kleine RNA ist eine Art von wenig vorkommenden, kurzen (<200 nt) nicht-protein-kodierenden RNAs, die keine Polyadenylierung aufweisen. Die Populationen kleiner RNAs können zwischen verschiedenen Gewebearten und Spezies erheblich variieren. Im Allgemeinen entstehen kleine RNAs durch Fragmentierung längerer RNA-Sequenzen mit Hilfe spezieller Enzymgruppen und anderer Proteine.

Kleine RNAs wirken bei der Genstilllegung und der posttranskriptionalen Regulation der Genexpression. Allerdings ist kleines RNA nicht ausreichend für die Induktion von RNA-Interferenz. Es muss in der Regel den Kern des RNA-Protein-Komplexes bilden, der als RNA-induziertes Silencing-Komplex (RISC) bekannt ist. siRNAs können die mRNA in der Mitte des mRNA-siRNA-Duplexes spalten, und die resultierenden mRNA-Hälften werden von anderen zellulären Enzymen abgebaut. Im Gegensatz zum siRNA-Weg wird der miRNA-vermittelte Abbau durch die enzymatische Entfernung des polyA-Schwanzes der mRNA eingeleitet. piRNAs sind entscheidend für die Entwicklung von Keimzellen. Kleine RNAs haben sich als an einer Reihe biologischer Prozesse beteiligt erwiesen, einschließlich Entwicklung, Zellproliferation und -differenzierung sowie Apoptose.

Durch die Nutzung einer enormen Leistung mit beispielloser Empfindlichkeit und Dynamikbereich, NGS kann schwach exprimierte kleine RNAs identifizieren und gleichzeitig die Heterogenität in Länge und Sequenz quantitativ aufzeigen. NGS ist ein leistungsstarkes Werkzeug zur Untersuchung der Funktion von kleinen RNAs und zur Vorhersage potenzieller mRNA-Zielmoleküle, ohne dass verfügbare Referenzgenome erforderlich sind. Der Erwerb einer hochwertigen kleinen RNA-Sequenzierungsbibliothek beginnt mit der Isolation kleiner RNAs durch Größenfraktionierung mittels Gel-Elektrophorese oder Silica-Spin-Säulen aus totaler RNA. Nach der Ligatur von RNA-Adaptern unter Verwendung eines 5'-adenylierten DNA-Adapters mit einem blockierten 3'-Ende werden kleine RNAs revers transkribiert, durch PCR amplifiziert und sequenziert. Um bekannte miRNAs zu identifizieren und zu annotieren, können die Sequenzierungsreads einer artspezifischen Datenbank wie mirWalk und miRBase zugeordnet werden.

Vorteile unseres Small RNA-Sequenzierungsdienstes

  • Kleine RNA und miRNA-Profiling
  • Das Verständnis, wie die posttranskriptionale Regulation zum Phänotyp beiträgt
  • Identifizierung weiterer nicht kartierter kleiner RNAs und Isoformen sowie neuer Biomarker
  • Hohe Auflösung, hohe Genauigkeit: Erkennung von Einzel-Nukleotid-Unterschieden, präzises Zählen von wenigen bis zu zehntausenden Kopien
  • Hohe Durchsatz, hohe Qualität: Über 8 Millionen Sequenzen in einem Sequenzierungslauf erhalten, kurze Experimentierdauer, hohe Effizienz, niedrige Kosten und zuverlässige Qualität.
  • Standardisierter analytischer Workflow: Professionelle Bioinformatik-Teams und Analyse-Dienste zur Bereitstellung standardisierter, fortschrittlicher und maßgeschneiderter Analysen.
  • Umfangreiche Erfahrung in der kleinen RNA-Sequenzierung und -Analyse: Professionelle Sequenzierungstechniker unterstützen bei der experimentellen Planung, Problemlösung und Ergebnisanalyse.
  • Angepasste kleine RNA-Sequenzierungsprotokolle: Personalisierte kleine RNA-Sequenzierungspläne entsprechend spezifischer Bedürfnisse anpassen.

Kleines RNA-Sequenzierungs-Workflow

CD Genomics nutzt die Illumina HiSeq-Plattformen zur Sequenzierung von kleinen RNAs. Wir haben flexible Strategien zur Entdeckung und Profilierung von miRNA (15-30 nt) und/oder kleinen RNAs (30-200 nt). Unser hochqualifiziertes Expertenteam führt ein Qualitätsmanagement durch, das jeden Schritt überwacht, um zuverlässige und unvoreingenommene Ergebnisse zu gewährleisten. Der allgemeine Arbeitsablauf für die Sequenzierung kleiner RNAs ist unten skizziert.

Workflow Diagram of Small RNA Sequencing.

Dienstspezifikation

Musteranforderungen
  • Gesamt-RNA ≥ 1 μg, Mindestmenge: 200 ng, Konzentration ≥ 20 ng/µl
  • Zellen ≥ 2×106
  • Gewebe ≥ 500 mg, Mindestmenge: 100 mg
  • OD A260/A280-Verhältnis ≥ 1,8, A260/230-Verhältnis ≥ 1,8, RIN ≥ 6
  • Alle totalen RNA-Proben sollten DNA-frei sein.
  • RNA sollte in nukleasefreiem Wasser oder RNA Stable gelagert werden.
Hinweis: Musterbeträge sind nur zur Referenz aufgeführt. Für detaillierte Informationen bitte kontaktieren Sie uns mit Ihren maßgeschneiderten Anfragen.

Klicken
Sequenzierungsstrategien
  • Bibliotheken von miRNA (15-30 nt), kleinen RNA (30-200 nt) oder benutzerdefinierten Größenbereichen
  • Illumina HiSeq SE50
  • ≥ 10 M Lesevorgänge
  • Mehr als 90 % der Basen mit einem ≥Q30-Qualitätswert
Datenanalyse
Wir bieten mehrere maßgeschneiderte bioinformatische Analysen an:
  • Qualitätskontrolle der Rohdaten und Längenfilter
  • Referenzbasierte Kartierung
  • Klassifizierung und Quantifizierung von kleinen RNAs
  • Zielgenvorhersage und Annotation
  • Neuartige kleine RNA-Vorhersage
  • Zielgenanalyse von differentiell exprimierten kleinen RNAs (GO-Anreicherung und KEGG-Anreicherung)
Hinweis: Die empfohlenen Datenoutputs und Analyseinhalte, die angezeigt werden, dienen nur zur Referenz. Für detaillierte Informationen, bitte Kontaktieren Sie uns mit Ihren maßgeschneiderten Anfragen.

Analyse-Pipeline

The Data Analysis Pipeline of Small RNA Sequencing.

Liefergegenstände

  • Die ursprünglichen Sequenzierungsdaten
  • Experimentelle Ergebnisse
  • Datenanalysebericht
  • Details zur Small RNA-Sequenzierung für Ihre Schrift (Anpassung)

CD Genomics bietet umfassende Pakete für die kleine RNA-Sequenzierung an, die die Standardisierung von Proben, die Bibliotheksvorbereitung, die Tiefensequenzierung, die Qualitätskontrolle der Rohdaten, die Genomassemblierung und maßgeschneiderte bioinformatische Analysen umfassen. Wir können diese Pipeline an Ihr Forschungsinteresse anpassen. Wenn Sie zusätzliche Anforderungen oder Fragen haben, zögern Sie bitte nicht, uns zu kontaktieren. Kontaktieren Sie uns.

Teilweise Ergebnisse sind unten aufgeführt:

Distribution graph showing sequencing quality metrics

Sequenzierungsqualitätsverteilung

Nucleotide distribution chart for A, T, G, and C bases

A/T/G/C-Verteilung

Genome visualization in IGV browser with sample data

IGV-Browser-Oberfläche

Sample correlation analysis scatter plot

Korrelationsanalyse zwischen Proben

PCA score plot visualizing sample group differences

PCA-Score-Diagramm

Venn diagram illustrating data overlap between groups

Venn-Diagramm

Volcano plot of differentially expressed gene analysis

Vulkan-Plot

GO annotation statistics showing category breakdowns

Statistische Ergebnisse der GO-Annotation

KEGG pathway classification of gene functions

KEGG-Klassifikation

1. Wie ist der Arbeitsablauf für die Datenvorverarbeitung?

Die ersten Schritte sind das Trimmen der Adapter mit FASTX und eine optionale k-mer-Korrektur mit ECHO. Anschließend wird das Expressionsprofil durch Genom-Mapping und Annotation erstellt. Wenn die Anzahl der Reads pro Probe variiert, wird eine Normalisierung angewendet, um die Auswirkungen von Unterproben zu kompensieren.

2. Wie viele Reads sind für die kleine RNA-Sequenzierung erforderlich?

Es hängt von Ihrer Anwendung ab. Für die Expressionsprofilierung liegt der akzeptierte Bereich für zugeordnete Reads pro Probe bei 100K-2M. Für Entdeckungsanwendungen sollten mindestens 5-10M in Betracht gezogen werden.

3. Wie viele biologische Replikate benötige ich für jede Bedingung?

Biologische Replikate können das Vertrauen erhöhen und experimentelle Fehler reduzieren, und wir empfehlen, mindestens drei Replikate pro Probe einzureichen. Beachten Sie, dass die endgültige Anzahl der Replikate durch Ihre endgültigen experimentellen Bedingungen bestimmt wird.

4. Wie sollte ich Proben versenden?

Sie können mit Trockeneis oder RNAstable bei Raumtemperatur versenden. Empirisch ergibt der Versand von RNA-Proben in RNAstable eine gute RNA-Qualität nach der Rehydrierung.

5. Kann ich einreichen E. coli Zellen oder Gewebeproben?

Ja, neben RNAs können Sie auch gefrorene Proben einreichen. E. coli Zellpellets oder Gewebe mit Trockeneis.

6. Ist eine Poly-A-Anreicherung oder RNA-Depletion für die Mikrorna-Sequenzierung erforderlich?

Keine Anreicherung ist erforderlich für MikroRNA-Sequenzierung weil Adapter nur selektiv an kleine RNAs ligiert werden.

Ich stellte fest, dass ich die heruntergeladene FASTQ-Datei nicht öffnen konnte.

Bitte stellen Sie sicher, dass Ihr Computer über genügend RAM verfügt, um die großen Dateien zu öffnen. Sie können sie mit einem Texteditor auf Windows-Computern mit ausreichend RAM oder auf Linux-Computern, was die bevorzugte Option ist, öffnen. Alternativ können Sie auch andere spezifische Leser für fastq-Dateien in Betracht ziehen.

Neuartige Entdeckung von Mikro-RNAs mittels kleiner RNA-Sequenzierung im postmortalen menschlichen Gehirn

Journal: BMC Genomics
Impactfaktor: 3,729
Veröffentlicht: 4. Oktober 2016

Hintergrund

Mikro-RNAs (miRNAs) regulieren die Genexpression hauptsächlich durch die translationalen Hemmung von Ziel-mRNA-Molekülen. Über 2700 menschliche miRNAs wurden identifiziert, und einige wurden mit Krankheitsphänotypen in Verbindung gebracht und zeigten gewebespezifische Expressionsmuster. Die Autoren führten Studien zur Sequenzierung kleiner RNAs an 93 postmortalen Proben des präfrontalen Kortex von Patienten mit Huntington-Krankheit oder Parkinson-Krankheit durch. Dabei entdeckten sie erfolgreich 99 potenziell neuartige miRNAs.

Materialien & Methoden

Probenvorbereitung:
  • Gefrorenes Gehirngewebe
  • Isolation und Reinigung von Gesamt-RNA
Sequenzierung:
  • Bibliotheksbau
  • Einzelend-Sequenzierung
  • Illumina HiSeq 2000 System
  • miRNA-Sequenzierung
  • Kleine RNA-Sequenzierung
Datenanalyse:
  • Identifizierung neuer miRNAs
  • Sequenzähnlichkeit mit bekannten miRNAs
  • Differenzielle Expressionsanalyse

Ergebnisse

Figure 1. Flowchart illustrating the novel miRNA discovery pipeline. (Wake et al., 2016)Abbildung 1. Flussdiagramm-Darstellung des neuartigen miRNA-Entdeckungsprozesses.

Insgesamt wurden 8891 miRNAs identifiziert.

Die miRDeep*-Analyse von Sequenzdaten aus 93 Proben des menschlichen präfrontalen Kortex identifizierte 8891 miRNAs. Nach der Filterung bekannter miRNAs aus miRBase v20, anderen kleinen RNAs und Exons blieben 3641 miRNAs übrig. Der Rest wurde anhand des miRDeep*-Scores gefiltert. Höhere Scores weisen auf eine höhere Zuverlässigkeit des miRNA-Ergebnisses hin. Insgesamt wurden schließlich 99 putative neuartige miRNAs identifiziert.

Figure 2. Comparison of miRDeep* putative miRNAs and miRBase miRNAs (A), and genomic locations of the putative novel miRNAs (B). (Wake et al., 2016)Abbildung 2. miRDeep* potenzielle miRNAs und miRBase miRNAs (A) sowie genomische Standorte der potenziellen neuartigen miRNAs (B).

Insgesamt 99 vermeintlich neuartige miRNAs

Mit dem SSEARCH-Aligner haben 34 der 99 putativen neuartigen reifen miRNAs gut mit mindestens einer reifen miRNA aus der miRBase v20 übereingestimmt. Die Analyse der differentiellen Expression unter Verwendung linearer Modelle, die für das Todesalter angepasst wurden, zeigte, dass 4 der 99 putativen miRNAs differentiell zwischen Kontroll- und Huntington-Krankheitsproben exprimiert sind und dass 3 differentiell zwischen Kontroll- und Parkinson-Krankheitsproben exprimiert sind (Tabelle 2). Die detaillierten Daten sind in Tabelle 2 dargestellt, die von LIMMA v. 3.33.7 generiert wurden.

Figure 3. Comparison among putative novel miRNAs, replication data miRNAs, and Londin et al. miRNAs. (Wake et al., 2016)Abbildung 3. Vermutete neuartige miRNAs, Replikationsdaten miRNAs und Londin u. a.miRNAs.

Fazit

Die Autoren entwickelten eine Pipeline unter Verwendung von miRDeep*, gebündeltem RNA-Sequencing und Score-Filterung, um 99 putative neuartige miRNAs aus 93 postmortalen menschlichen Proben des präfrontalen Kortex zu entdecken. Sieben dieser miRNAs wurden experimentell validiert, und 19 wurden in einem unabhängigen Datensatz repliziert. Einige miRNAs zeigten eine unterschiedliche Expression zwischen HD- und Kontrollproben oder PD- und Kontrollproben, was auf potenzielle Rollen in neurodegenerativen Erkrankungen hindeutet. Diese Ergebnisse unterstreichen die Vielfalt der menschlichen miRNAs, insbesondere in gewebespezifischen Kontexten, und deren potenzielle Implikationen für das Verständnis von Erkrankungen wie HD und PD.

Referenz:

  1. Wake C, Labadorf A, Dumitriu A, u. a.Neuartige microRNA-Entdeckung mittels kleiner RNA-Sequenzierung im postmortalen menschlichen Gehirn. BMC Genomics, 2016, 17(1): 776.

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