Bakterielle RNA-Sequenzierung

Neben Eukaryoten RNA-Sequenzierung Der Service von CD Genomics ist auch darauf ausgerichtet, prokaryotische RNA-Sequenzierungsdienste anzubieten, um Ihre Bedürfnisse im Bereich der bakteriellen Genexpressionsprofilierung mit den neuesten Techniken voranzutreiben.

Die Einführung der bakteriellen RNA-Sequenzierung

In den letzten Jahren, Hochdurchsatz-Sequenzierung von cDNA-Bibliotheken (RNA-Seq) hat sich als eine leistungsstarke Technologie zur Profilerstellung der Genexpression, zur Entdeckung zuvor nicht annotierter Gene und zur Kartierung der Transkriptomarchitektur in einer Vielzahl von Bakterienarten etabliert. Mit der Anwendung von RNA-Seq abgeleitete Ansätze können uns biologische Einblicke in die bakterielle Welt ermöglichen und uns dazu anregen, die Geheimnisse der Genexpression, Organisation und anderer funktioneller genomischer Merkmale zu entschlüsseln. Das bakterielle Transkriptom und Metatranskriptom Information sind wichtig für die Vorhersage der Resistenz gegenüber spezifischen Antibiotika, das Verständnis der Immuninteraktionen zwischen Wirt und Pathogen, die Quantifizierung von Veränderungen der Genexpression und die Verfolgung des Krankheitsverlaufs.

Es gibt offensichtliche Unterschiede in der Konstruktion von cDNA-Bibliotheken zwischen bakterieller RNA-Seq und eukaryotischer RNA-Seq. Der erste Schritt des Workflows der bakteriellen RNA-Seq ist die Auswahl von mRNA-Transkripten. Die Ribo-Zero-Ribosomen-RNA-Reduktionschemie wird anstelle einer Poly-A-Schwanzauswahl verwendet, was diese Methode besonders geeignet für Bakterien macht, da deren mRNA keinen Poly-A-Schwanz hat. Nach der Reinigung wird die mRNA in kleine Stücke fragmentiert und in die erste cDNA-Strang mithilfe von reverser Transkriptase und zufälligen Primern kopiert. Die Strangspezifität wird erreicht, indem dTTP im Second Strand Marking Mix (SMM) durch dUTP ersetzt wird, gefolgt von der Synthese des zweiten cDNA-Strangs. Durch die Verwendung von strangspezifischer RNA-Seq könnte ein umfassenderes Verständnis des Transkriptoms erreicht werden, was das Potenzial hat, neue Ebenen der Regulation der Genexpression zu identifizieren.

Vorteile der bakteriellen RNA-Sequenzierung

• Genauigkeit der Genstrukturannotation: Transkriptom-Sequenzierung In Prokaryoten können kleine Peptide identifiziert werden, die bei der Genomanalyse übersehen werden könnten, was genauere Informationen über die Genstruktur liefert.
• Erkennung und Annotation von nicht-kodierenden regulatorischen Regionen der mRNA: Die Transkriptom-Sequenzierung zeigt wichtige regulatorische Elemente in prokaryotischer mRNA, wie Riboswitches und Bindungsstellen für kleine RNAs, und verbessert unser Verständnis der regulatorischen Mechanismen von mRNA.
• Studie der Operonstruktur und -funktion: Die Transkriptomanalyse kann Operonstrukturen bestimmen und unser Verständnis der multifunktionalen Regulation und Evolution polycistronischer Transkripte vorantreiben.
• Forschung zur Regulation von nicht-kodierenden RNAs: Durch die Sequenzierung von prokaryotischen sRNAs gewinnen wir Einblicke in die Funktion und Mechanismen dieser regulatorischen Elemente in der physiologischen Kontrolle.
• Plastizität der Funktionen von RNA-Elementen: Die Transkriptom-Sequenzierung zeigt die funktionale Vielseitigkeit von RNA-Elementen unter verschiedenen Bedingungen und trägt zum Verständnis ihrer Rollen in unterschiedlichen Umgebungen bei.

Anwendung der bakteriellen RNA-Sequenzierung

• Untersuchung der molekularen Regulationsmechanismen von Mikroorganismen in Bezug auf verschiedene Stadien, Phänotypen und Stressreaktionen.
• Verbesserung der mikrobiellen Transkriptominformationen, einschließlich der Bestimmung der Transkriptstruktur, der Vorhersage neuer Transkripte und der Identifizierung nicht-kodierender RNAs.
• Genexpressionsniveau
• Genstruktur-Ebene
• Genfunktion
• Interaktionsnetzwerk
• Identifikation von differentiellen Genen
• Erkennung von nicht-kodierenden RNAs usw.

Bakterielle RNA-Sequenzierungs-Workflow

Die primären Phasen des bakteriellen RNA-Sequenzierens beginnen mit der Extraktion von Gesamt-RNA aus Bakterienzellen. Dieser Vorgang wird gefolgt von der Eliminierung von rRNA, die die Gesamt-RNA überwiegt, um die mRNA-Population selektiv zu erhöhen. Anschließend wird die mRNA durch Reverse Transkription in komplementäre DNA (cDNA) umgewandelt. Die resultierende cDNA wird fragmentiert, Adapter werden ligiert und eine PCR-Amplifikation wird durchgeführt, um die Sequenzierbibliothek zu erstellen. Anschließend wird eine Hochdurchsatz-Sequenzierung unter Verwendung von Plattformen wie Illumina oder PacBio durchgeführt. Die abschließende Phase umfasst einen sorgfältigen Datenanalyseprozess, der Qualitätssicherung, Sequenzausrichtung, Quantifizierung und die Untersuchung der differentiellen Expression umfasst.

Dienstspezifikationen

	Beispielanforderungen RNA-Menge: Gesamt-RNA≥1 μg (ohne Abbau oder DNA-Kontamination) Zellen ≥ 1x107 OD A260/A280-Verhältnis ≥ 1,8, A260/230-Verhältnis ≥ 1,8, RIN ≥ 6 Alle Gesamt-RNA-Proben sollten DNA-frei sein. RNA sollte in nukleasefreiem Wasser oder RNA Stable aufbewahrt werden. Hinweis: Musterbeträge sind nur zur Referenz aufgeführt. Für detaillierte Informationen bitte Kontaktieren Sie uns mit Ihren maßgeschneiderten Anfragen.
Klicken	Sequenzierungsstrategie HiSeq X ten, 150 PE, 1~3 G/pro Probe MGI DNBSEQ-T7/DNBSEQ-G400
	Bioinformatikanalyse Analyse auf der Ebene der Genstruktur Qualitätsbewertung von Sequenzierungsdaten Rohdatenfilterung Karte zum Referenzgenom Neue Transkriptvorhersage UTR-Analyse Vorhersage von Antisense-Transkripten sRNA-Analyse SNP-Erkennung und -Analyse InDel-Analyse Analyse des Genexpressionsniveaus Analyse des differentiellen Genexpressionsniveaus GO- und KEGG-Annotation von differentiellen Genen. GO/KEGG-Anreicherungsanalyse von differentiellen Genen. Analyse von Protein-Interaktionsnetzwerken Visualisierungsergebnisanzeige Hinweis: Die empfohlenen Datenoutputs und Analyseinhalte, die angezeigt werden, dienen nur zur Referenz. Für detaillierte Informationen, bitte kontaktieren Sie uns mit Ihren maßgeschneiderten Anfragen.

Analyse-Pipeline

Liefergegenstände

• Die ursprünglichen Sequenzierungsdaten
• Experimentelle Ergebnisse
• Datenanalysebericht
• Details zur bakteriellen RNA-Sequenzierung für Ihre Schreibanpassung

CD Genomics bietet eine schnelle, umfassende Lösung für die bakterielle RNA-Sequenzierung, von der Qualitätskontrolle der Proben bis zur umfassenden Datenanalyse. kontaktieren Sie uns für weitere Informationen und ein detailliertes Angebot.

Referenzen

1. Kröger C, MacKenzie K D, Alshabib E Y, et al. Das primäre Transkriptom, kleine RNAs und Regulation der antimikrobiellen Resistenz in Acinetobacter baumannii ATCC 17978. Nukleinsäurenforschung, 2018, 46(18): 9684-9698.
2. Liu X, Shen B, Du P, et al. Transkriptomische Analyse der Reaktion von Pseudomonas fluorescens auf Epigallocatechingallat mittels RNA-Seq. PloS One, 2017, 12(5): e0177938.

Teilweise Ergebnisse sind unten aufgeführt:

Sequenzierungsqualitätsverteilung

A/T/G/C-Verteilung

IGV-Browser-Oberfläche

Korrelationsanalyse zwischen Proben

PCA-Score-Plot

Venn-Diagramm

Vulkan-Plot

Statistische Ergebnisse der GO-Annotation

KEGG-Klassifikation

1. Warum ist die Entfernung von rRNA notwendig?

Die sorgfältige Entfernung von ribosomaler RNA (rRNA) hat eine entscheidende Bedeutung in der bakteriellen RNA-Sequenzierung, da sie in bakteriellen RNA-Proben überwiegend vorhanden ist und oft mehr als 90 % des gesamten RNA-Gehalts ausmacht. Da die messenger RNA (mRNA) - das primäre Ziel der Sequenzierungsbemühungen - nur einen geringen Anteil des gesamten RNA-Pools ausmacht, ist eine effektive rRNA-Depletion unerlässlich, um die überwältigende Fülle von rRNA-Sequenzen in Sequenzierungsdatensätzen zu verringern. Das Versäumnis, rRNA zu eliminieren, kann die Sequenzierungsgenauigkeit erheblich gefährden und die Empfindlichkeit der mRNA-Erkennung beeinträchtigen.

2. Ist es möglich, eine prokaryotische Transkriptom-Sequenzierung ohne Referenzgenom durchzuführen?

Nein, da es praktisch nicht machbar ist. Prokaryotische mRNA ist häufig polycistronisch, was eine direkte Assemblierung unzuverlässig macht.

3. Wie unterscheidet sich die Einzelzell-RNA-Sequenzierung von der bakteriellen RNA-Sequenzierung?

Die Einzelzell-RNA-Sequenzierung hebt sich von der bakteriellen RNA-Sequenzierung ab, da sie den Fokus auf das Studium der Genexpression auf der Ebene einzelner Zellen legt und Zell-zu-Zell-Variationen aufdeckt. Im Gegensatz zur bakteriellen RNA-Sequenzierung, die die durchschnittliche Genexpression einer bakteriellen Population untersucht, liegt die Einzigartigkeit der Einzelzell-RNA-Sequenzierung in ihren unterschiedlichen Ansätzen zur Probenvorbereitung, Datenanalyse und potenziellen Anwendungen.

Der Anspruch auf die Vorrangstellung des menschlichen Darms Bacteroides ovatus bei der diätetischen Cellobiose-Abbau

Journal: Gut-Mikroben
Impactfaktor: 11,724
Veröffentlicht: 22. Juni 2023

Hintergrund

Zellulose, ein Hauptbestandteil der Pflanzenzellwände, kann von Säugetieren ohne die Unterstützung von cellulolytischen Bakterien nicht verdaut werden. Diese Bakterien, die im Verdauungstrakt verschiedener Tiere, einschließlich Menschen, leben, spielen eine wesentliche Rolle beim Abbau von Zellulose und liefern so Energie für ihre Wirte. Obwohl eine beträchtliche Anzahl cellulolytischer Bakterien identifiziert wurde, sind viele noch unzureichend charakterisiert. Die Schlüsselgene, die für die Produktion von Cellulase verantwortlich sind, befinden sich überwiegend innerhalb der Glycosid-Hydrolase (GH) Familien. Bei Menschen wurde die Cellulase-Aktivität bemerkenswert beobachtet in Ruminococcus champanellensis, aber weitere Untersuchungen sind unerlässlich, um die funktionalen Mechanismen vollständig zu erläutern. Jüngste Fortschritte, die unter Verwendung von RNA-Sequenzierung (RNA-Seq) und 16S rRNA-Sequenzierungsind darauf fokussiert, neue Cellulasen zu entdecken und die komplexen Prozesse zu verstehen, die dem Abbau von Cellulose im menschlichen Darm zugrunde liegen.

Methoden

Ergebnisse

Um die PULs zu untersuchen, die für den Cellobioseabbau verantwortlich sind, wurde BO, das mit Cellobiose ko-kultiviert wurde, einer RNA-Sequenzierung unterzogen. Die Ergebnisse zeigten 91 Gene mit veränderter Expression als Reaktion auf Cellobiose, von denen 19 im Vergleich zu BO, das auf Glukose gewachsen war, signifikant hochreguliert waren. Diese hochregulierten Gene wurden in zwei PULs organisiert, PUL1 und PUL2, was durch RT-qPCR bestätigt wurde. PUL1, das 15 Gene umfasst, darunter Glycosidase-Hydrolasen (GH5 und GH2) sowie sechs hypothetische Proteine, und PUL2, das fünf Gene umfasst, darunter GH16 und GH3, sind am Cellobioseabbau beteiligt. Bemerkenswert ist, dass PUL1 zuvor nicht berichtet wurde.

Abbildung 1. Polysaccharid-Nutzungsorte (PULs) wurden durch RNA-Seq untersucht und durch RT-qPCR bestätigt.

Um die spezifischen Wege zu erläutern, auf denen der Zellobioseabbau im Bakterium erleichtert wird, wurden rekombinante Proteine, die jedes Polysaccharid-Nutzungs-Locus (PUL) repräsentieren, isoliert und Immunseren zur Charakterisierung produziert. Offensichtlich zeigten die Proteine BACOVA_02626GH5, BACOVA_02630GH5 und BACOVA_02745GH3 eine spezifische Hochregulation in Anwesenheit von Zellobiose, was auf ihre direkte Beteiligung am Abbau dieses Substrats hinweist. Durch eine Kombination aus Immunfluoreszenz- und Western-Blot-Analysen wurde festgestellt, dass BACOVA_02630GH5 überwiegend in der Zellmembran lokalisiert ist, während BACOVA_02626GH5 und BACOVA_02745GH3 in relativ niedrigeren Mengen innerhalb der Zelle exprimiert wurden. Enzymatische Bewertungen bestätigten zudem die Fähigkeit von BACOVA_02626GH5, BACOVA_02630GH5 und BACOVA_02745GH3, die Umwandlung von Zellobiose in Glukose zu katalysieren. Diese kollektiven Beobachtungen unterstreichen die unverzichtbare Rolle, die diese Proteine im Zellobioseabbauweg innerhalb des Bakteriums spielen.

Abbildung 2. Zwei neue Cellulasen wurden bestimmt.

Um bakterielle funktionale Aktivitäten zu untersuchen, verwendeten wir PICRUSt1/2 und Tax4Fun, um 16S rRNA-Sequenzen auf Gene und Wege abzubilden. Die unüberwachte Clusteranalyse von 49 vorhergesagten metabolischen MetaCyc-Wegen zeigte signifikante Unterschiede zwischen der Fahrzeug- und der Cellobiose-Gruppe, was auf cellobiose-spezifische mikrobiommetabolische Wege hinweist. Tax4Fun sagte voraus, dass nur β-N-Acetylhexosaminidase, Alpha-Glucosidase und β-Galactosidase von der Fahrzeuggruppe abwichen. Die PICRUSt1-Analyse ergab angereicherte KEGG-Wegen, die mit der Histidin-, Methan-, Vitamin B6- und Folsäurebiosynthese nach der Cellobiose-Behandlung in Zusammenhang standen. Es wurde gezeigt, dass der Histidinmetabolismus und β-N-Acetylhexosaminidase die Dickdarmentzündung hemmen. Die Cellobiose-Behandlung verringerte die mRNA- und Proteinspiegel von TNF-α und IL-6 und erhöhte die mRNA-Expression von H2R. Diese Ergebnisse deuten darauf hin, dass Cellobiose die bakteriellen Stoffwechselvorgänge verändern könnte, obwohl ihre Auswirkungen auf Entzündungen unklar bleiben und weiterer Untersuchungen bedürfen.

Abbildung 3. Vorhersage der Stoffwechselfunktion von Bakterien und Nachweis von Entzündungsfaktoren.

Fazit

Cellulolytische Bakterien sind entscheidend für den Abbau von Cellulose, doch ihre molekularen Mechanismen sind bislang unzureichend erforscht. Cellobiose, eine Celluloseeinheit, fördert das Wachstum des wichtigen Darmbakteriums BO, aber der molekulare Mechanismus ist unklar. Diese Studie identifizierte zwei neue Zelloberflächen-Cellulasen in BO, die Cellobiose in Glukose abbauen. Diese Cellulasen, deren Strukturen denen von Enzymen aus Bodenbakterien ähneln, deuten auf eine evolutionäre Anpassung hin. In-vivo-Tests zeigten, dass Cellobiose die Darmmikrobiota umgestaltete und Entzündungen reduzierte, was auf potenzielle entzündungshemmende Eigenschaften hindeutet. Diese Forschung erweitert unser Verständnis des Celluloseabbaus im menschlichen Darm und hebt die Notwendigkeit weiterer Untersuchungen der cellulolytischen Fähigkeiten der Darmmikrobiota hervor.

Referenz

1. Li M, Wang Y, Guo C, et al. Der Anspruch auf die Primat der menschlichen Darm-Bacteroides ovatus bei der Abbau von diätetischem Cellobiose. Gute Mikroben, 2023, 15(1): 2227434.