Metatranskriptomische Sequenzierung zur funktionalen Profilierung des Mikrobioms

Entdecken Sie die mikrobielle Aktivität in Echtzeit mit hochauflösender RNA-Seq

Profilieren Sie die aktive Genexpression von Bakterien, Pilzen, Viren und Archaeen, um mikrobielle Funktionen in der Umwelt-, Agrar- und Mikrobiomforschung aufzudecken.

Unser RNA-basiertes Profiling liefert umsetzbare Erkenntnisse – funktionale Wege, Biomarker und veröffentlichungsbereite Daten – um Ihren Forschungserfolg zu beschleunigen.

  • Umfassende RNA-Expressionsprofilierung über die Reiche hinweg
  • Hocheffiziente rRNA-Depletion mit robuster Bibliothekskonstruktion
  • Genaues Sequencing mit Illumina PE150 und Q30 ≥85%
  • Vollständiger Bioinformatik-Service und fachkundige Unterstützung während des gesamten Prozesses
Richtlinien zur Einreichung von Mustern

Liefergegenstände

  • Roh-FASTQ-Dateien
  • Bibliotheks-QC-Bericht
  • Expressionsmatrix & Annotationen
  • Visualisierungen (Vulkanplots, Heatmaps usw.)
  • Abschlussanalysebericht
Inhaltsverzeichnis

    Sehen Sie sich unsere Fallstudie zur Transkriptomanalyse von wilden Erdnussverwandten unter Trockenstress und Pilzstress an, um unsere Expertise in Aktion zu erleben.
    Fallstudie anzeigen

    Was ist metatranskriptomische Sequenzierung?

    Metatranskriptomische Sequenzierung bietet einen Echtzeit-Einblick in die Genaktivität innerhalb mikrobieller Gemeinschaften. Anstatt zu analysieren, welche Gene vorhanden sind (wie in der Metagenomik), konzentriert sich diese Methode darauf, welche Gene unter bestimmten Bedingungen aktiv exprimiert werden – und offenbart mikrobielles Verhalten, Regulation und metabolische Ausgaben. Egal, ob Sie das Mikrobiom des Darms oder ein industrielles Fermentationssystem untersuchen, die Metatranskriptomik beantwortet die Frage:

    „Was machen die Mikroben gerade?“

    Wie es funktioniert:

    • Extrahieren Sie die gesamte RNA aus der Probe (z. B. Stuhl, Erde, Gewebe).
    • Entfernen Sie ribosomale RNA (rRNA), um die messenger RNA (mRNA) anzureichern.
    • mRNA in komplementäre DNA (cDNA) umwandeln
    • Konstruiere Sequenzierungsbibliotheken und führe Hochdurchsatz-Sequenzierung durch.
    • Analysiere Genexpressionsmuster, um aktive mikrobielle Funktionen aufzudecken.

    Overview of the metatranscriptomics workflow.Metatranskriptomische Sequenzierungs-Workflow.

    Warum Metatranskriptom-Sequenzierung wählen?

    Diese Technik der nächsten Generation bietet tiefgehende funktionale Einblicke, die DNA-basierte Methoden nicht liefern können. Anstatt lediglich zu identifizieren Wer ist da?, es offenbart was sie tun.

    • Direkter Einblick in die mikrobielle Funktion
      Quantifiziert die Genexpression über alle mikrobiellen Domänen hinweg – Bakterien, Archaeen, Pilze und Viren.
    • Kulturfreie, umfassende Erkennung
      Durch die Umgehung der Notwendigkeit der Kultivierung erfasst die Methode die Dynamik von Gemeinschaften in der realen Welt über alle Mikroben hinweg, einschließlich nicht kultivierbarer Arten.
    • Dynamische, zeitaufgelöste Analyse
      Vergleichen Sie die Genexpression über Zeitpunkte oder Behandlungsbedingungen hinweg, um funktionale Veränderungen zu identifizieren oder potenzielle Biomarker zu erkennen.
    • Unterstützt mechanistische Entdeckung
      Kombiniert mit Datenbanken wie KEGG hilft es, Stoffwechselwege und regulatorische Netzwerke zu rekonstruieren.
    • Kompatibel mit Multi-Omik
      Integriert sich nahtlos mit Metagenomik, Wirts-Transkriptomik und Metabolomik für eine tiefere biologische Interpretation.

    Wie schneidet es im Vergleich zu anderen Mikrobiom-Tools ab?

    Technik Was es erkennt Spiegelt funktionale Aktivität wider? Auflösung Am besten geeignet für
    16S/ITS Amplicon Marker-Gene von Bakterien/Schimmelpilzen ❌ Nein Medium (Gattung/Art) Schnelles Screening, taxonomische Profilierung
    Metagenomik Alle mikrobielle DNA (Taxonomie + potenzielle Funktionen) ❌ Nein (nur funktionales Potenzial) Hoch (Belastungsniveau) Identifizierung von Arten und potenziellen Stoffwechselfähigkeiten
    Metatranskriptomik Aktiv exprimierte mikrobielle RNA ✅ Ja Hoch (Gen- + Stamm-Ebene) Expressionsprofilierung, Mechanismusstudien, Biomarkerentdeckung
    Gastgeber Transkriptomik Wirt-RNA-Expression ✅ Ja Hoch Studien zu Wirt-Mikrobe-Interaktionen

    End-to-End Metatranskriptom-Sequenzierungsdienst-Workflow

    Optimierter Service von der Probe bis zu den Ergebnissen – Maximierung von Qualität und Effizienz.

    Projektberatung

    Ziele definieren

    Workflow bestätigen

    Musterübermittlung & Qualitätskontrolle

    Proben registrieren

    RNA-Qualitätskontrolle

    (Optional) RNA-Extraktion

    rRNA-Entfernung & Bibliotheksvorbereitung

    Entfernen Sie rRNA (>90%)

    Bauen Sie dual-indizierte Bibliotheken

    Führen Sie die Qualitätskontrolle der Bibliothek durch.

    Sequenzierung

    Illumina / MGI Kurzlesungen

    PacBio-Langstrichsequenzer

    Anpassbare Tiefe

    Bioinformatik & Berichtserstellung

    Daten-QC

    Transkriptomanalyse

    Funktionale Annotation

    Berichtserstellung und -lieferung

    Holen Sie sich Ihr sofortiges Angebot

    Überblick über die Metatranskriptom-Sequenzierungsstrategie

    Unterstützte Probenarten:

    • Stuhl, Gewebe, Speichel, Abstriche und mehr

    Höhepunkte des Bibliotheksbaus:

    • >90% rRNA-Depletion
    • Einzigartige doppelte Indizierung
    • Strenge Qualitätsvalidierung

    Sequenzierungsplattformen

    • Illumina NovaSeq X: 150 bp PE – breites Expressionsprofiling
    • MGI DNBSEQ-G400100/150 bp PE – kosteneffektive Transkriptomik
    • PacBio Sequel IIe15–25 kb HiFi – Isoformen-Ebene Auflösung

    Empfohlene Tiefe:

    • Standard: 5–10 Gb/Stichprobe
    • Optional: Höhere Tiefe für Transkripte mit geringer Häufigkeit

    Datenqualitätsmetriken:

    • >80% Basen bei Q30+
    • Fehlerquote <0,1%
    • Genau, zuverlässige Ergebnisse

    Metatranskriptomische Bioinformatikanalyse

    Vollständig Datenanalyse von Rohdaten zu publikationsreifen Visualisierungen, die Ihre Forschungs- und Förderbedürfnisse unterstützen.

    Mikrobielle Expressionsprofilierung

    • Profil der aktiven Genexpression bei Bakterien, Pilzen, Viren und Archaeen
    • Visualisierung von Artenhäufigkeit und Diversitätsmetriken

    Funktionale Annotation und Pfadanalyse

    • Annotieren Sie Schlüsselgene mit UniRef und UniProt.
    • Rekonstruieren von Stoffwechselwegen mit KEGG und MetaCyc
    • Führen Sie eine differenzielle Pfad-Expressionsanalyse durch.

    Antibiotikaresistenz- und Virulenznachweis

    • Antibiotikaresistenzgene (AMR) und Virulenzfaktoren erkennen
    • Quantifizierung der Expression und Analyse der Pfadanreicherung

    Veröffentlichungsfertige Visualisierungen und Berichte

    • Hochwertige PCA, Heatmaps, Vulkanplots und mehr
    • Statistische Analyse einschließlich LEfSe für wichtige funktionale Unterschiede
    • Expressionsdaten normalisiert und in benutzerfreundlichen Tabellen bereitgestellt

    GBS Bioinformatics workflow

    Beispielanforderungen für metatranskriptomische Sequenzierung

    Um eine optimale Sequenzierungsleistung zu gewährleisten, müssen Proben die grundlegenden Mengen- und Reinheitsstandards erfüllen. Eine individuelle Beratung ist für spezialisierte Probenarten verfügbar.

    Probenart Mindestanforderungen
    Gesamt-RNA ≥ 4 μg (≥ 3 μg Mindestmenge), ≥ 50 ng/μL
    Kultivierte Zellen ≥ 5 × 10⁶ Zellen
    Umweltproben ≥ 1,5 Gramm

    📩 Nicht sicher, ob Ihr Muster geeignet ist? Kontaktieren Sie uns für eine persönliche Beratung zur Vorbereitung auf die Behandlung.

    Ist Metatranskriptomik das Richtige für meine Forschung?

    Metatranskriptomische Sequenzierung zeigt, was Ihr Mikrobiom tatsächlich tut, nicht nur, wer dort ist. Wenn Ihre Studie mikrobielle Aktivität, Dynamik der Genexpression oder Veränderungen in funktionalen Wegen umfasst, könnte diese Technik perfekt geeignet sein.

    Ideale Anwendungsfälle:

    • Gesundheit und Krankheitsmikrobiomstudien
      Verfolgen, wie sich die Mikrobiome des Darms, der Haut oder der Atemwege unter gesunden oder kranken Zuständen verhalten.
    • Medikamenten-, Diät- oder Umweltinterventionen
      Quantifizieren, wie Behandlungen die mikrobielle Genexpression und Stoffwechselwege beeinflussen.
    • Umwelt- und Agrarische Mikrobielle Ökologie
      Bewerten Sie die aktiven Funktionen von Mikroben in Böden, Gewässern oder wirtsassoziierten Systemen.
    • Probiotische und Mikrobiom-Therapeutika-Entwicklung
      Identifizieren Sie nützliche Stämme und validieren Sie deren funktionale Mechanismen in Aktion.
    • Unkultivierbare Mikrobentdeckung
      Erfassen aktiver Gene von schwer kultivierbaren Organismen, die von traditionellen Methoden übersehen wurden.

    Häufige Forschungsfragen, bei denen wir helfen können.:

    • Wie verändert sich die mikrobielle Genaktivität als Reaktion auf eine Behandlung oder Bedingung?
    • Welche Gene oder Signalwege werden nach einer diätetischen oder pharmakologischen Intervention aktiviert?
    • Kann ich neue Funktionen in Mikroben entdecken, die sich nicht im Labor kultivieren lassen?
    • Wie kann ich Stämme funktional charakterisieren für die Entwicklung von Probiotika oder Biomarkern?

    Kombinieren Sie Metatranskriptomik mit anderen Omics für tiefere Einblicke

    Gepaarte Technik Kombinierter Vorteil Beispielanwendung
    Metagenomik + Metatranskriptomik Identifizieren Sie sowohl potenzielle als auch tatsächliche Genaktivität. Unterscheidung zwischen stillen und aktiven Stämmen in mikrobiellen Gemeinschaften
    Gastgeber Transkriptomik Metatranskriptomik Entschlüsselung von Wirt-Mikrobe-Interaktionsnetzwerken Untersuchen von Entzündungs-/Infektionsmodellen
    Metabolomik + Metatranskriptomik Verknüpfen Sie die Genexpression mit dem tatsächlichen Stoffwechseloutput. Untersuchen Sie den Einfluss von Medikamenten/Diet auf den mikrobiellen Stoffwechsel.
    16S/ITS + Metatranskriptomik Große Kohorten screenen und dann in aktive Proben hineinzoomen. Effiziente Probenklassifizierung vor tiefgehender funktioneller Profilierung

    Warum CD Genomics für Metatranskriptom-Sequenzierung wählen?

    Wenn es darum geht, die mikrobielle Genexpression präzise und umfassend zu erfassen, bietet CD Genomics mehr als nur Sequenzierung – wir liefern umsetzbare Erkenntnisse, die auf jahrelanger Erfahrung und umfassendem Support basieren.

    • Umfangreiche Multi-Omics-Expertise
      Vertraut von führenden Forschungsinstituten und Biotech-Unternehmen verfügen wir über eine solide Erfolgsbilanz in den Bereichen Transkriptomik, Genomik und Mikrobiom-Profiling.
    • Flexible Plattformoptionen
      Wählen Sie aus den Plattformen Illumina, MGI oder PacBio, um Ihren Proben-Typ, Ihr Budget und Ihre Auflösungsanforderungen abzugleichen.
    • Angepasste bioinformatische Analyse
      Gewinnen Sie tiefere Einblicke durch fortgeschrittene Analysen, einschließlich funktioneller Annotation, Pfadanreicherung und differenzieller Expressionskartierung.
    • Strenge Qualitätskontrolle in jedem Schritt
      Von der Probenbearbeitung bis zur endgültigen Berichterstattung gewährleistet unser End-to-End-Rückverfolgbarkeitssystem zuverlässige, reproduzierbare Ergebnisse.
    • Expertenunterstützung von Anfang bis Ende
      Unser technisches Team bietet Echtzeitunterstützung und Problemlösungen, um Ihnen zu helfen, Zeitpläne zu beschleunigen und Projektprobleme zu überwinden.

    Teilweise Ergebnisse sind unten aufgeführt:

    Taxonomy distribution of samples at the Phylum classification level.

    Die Taxonomieverteilung aller Proben auf der Phylum-Klassifikationsebene.

    Heatmap showing species abundance across the samples.

    Artenhäufigkeit-Hitze-Karte.

    Rarefaction curve for sequenced reads across all samples.

    Seltenheitskurve der sequenzierten Reads für alle Proben.

    Boxplot analysis based on Bray Curtis, Jaccard, and UniFrac metrics.

    Boxplot-Analyse basierend auf Bray-Curtis (A), binärem Jaccard (B), ungewichteten Unifrac (C) und gewichteten Unifrac (D).

    PCoA analysis using Bray Curtis, Jaccard, and UniFrac distances.

    PCoA-Analyse basierend auf Bray-Curtis (A), binärem Jaccard (B), ungewichteten Unifrac (C) und gewichteten Unifrac (D).

    UPGMA clustering tree based on unweighted and weighted UniFrac.

    UPGMA-Clusterbaum basierend auf ungewichteten Unifrac (A) und gewichteten Unifrac (B).

    Boxplot of TPM (transcripts per million) for each sample.

    Boxplot der TPM für jede Probe.

    Correlation graph showing the relationship between gene numbers.

    Korrelationsgrafik der Genanzahl.

    GO annotation statistics for CLC_vs_SLC comparison.

    Statistikergebnisse der GO-Anmerkung für CLC_vs_SLC.

    KEGG pathway classification for CLC_vs_SLC comparison.

    CLC_vs_SLC KEGG-Klassifikation.

    Statistics of common and unique annotations in specific function databases.

    Statistik einer spezifischen Funktionsdatenbank mit gemeinsamen und einzigartigen Annotationen.

    CAZy functional classification of carbohydrate-active enzymes.

    CAZy-Funktionsklassifikation.

    1. Was sind die bemerkenswerten Probleme von RNA-Proben?

    Die Kontamination sollte beim Probenahme rigoros ausgeschlossen werden. Im Detail sollten die mit der Probenahme verbundenen Instrumente und Verbrauchsmaterialien sterilisiert und RNase-frei sein. Die frisch entnommenen Proben sollten sofort durch Eintauchen in flüssigen Stickstoff eingefroren oder uns direkt die ursprünglichen Umwelt- oder klinischen Proben übergeben werden. Die empfohlene Gesamtmenge an RNA für die Einreichung beträgt 6 µg oder mehr mit einer Konzentration von über 50 ng/µl.

    2. Welche Art von QC-Methoden wenden Sie für die Proben des Kunden an?

    Wir werden eine Qualitätskontrolle (QC) Ihrer totalen RNA-Proben vor der Sequenzierung durchführen. Wir verwenden den Agilent Bioanalyzer, um die RNA-Integritätszahl (RIN) zu bestimmen. Wenn die RIN unter 8 liegt, bestehen die Proben die QC nicht. Die Bibliotheks-QC wird ebenfalls mit dem Agilent Bioanalyzer durchgeführt, um die Bibliotheksgröße und -reinheit zu bestimmen. Außerdem führen wir vor dem Laden der Bibliotheken auf den Sequenzierer eine qPCR-Quantifizierung durch. Die Kosten dafür sind im Sequenzierungsservice enthalten. Die Rohdaten werden unseren Q30-Filter bestehen, was bedeutet, dass mehr als 80 % der Basen einen Qualitätswert von über Q30 aufweisen.

    3. Was sind die Vorteile der Metatranskriptomik?

    Metatranskriptomik ist die genomische Analyse vollständiger mikrobieller Transkriptome und bietet eine besonders reichhaltige Datenquelle zur globalen Vielfalt von RNA-Viren und ihrer evolutionären Geschichte. Metatranskriptomik hat mehrere Vorteile gegenüber traditionellen Methoden wie Zellkultur, Konsens-PCR und Metagenomik Ansätze zur Reinigung von Viruspartikeln.

    Metatranskriptomik hat sich als erfolgreich erwiesen, um die RNA-Virome verschiedener Wirbelloser zu charakterisieren. Insbesondere: (i) sie deckt das gesamte RNA-Virom auf, mit ausreichender Abdeckung, um vollständige virale Genome zusammenzusetzen, einschließlich derjenigen von co-infizierenden Parasiten; (ii) sie bietet eine zuverlässige Quantifizierung und Bewertung sowohl viraler als auch Wirts-RNAs; (iii) sie ist vergleichsweise einfach und erfordert minimale Probenverarbeitung; und (iv) sie liefert mehr Informationen als die Genomsequenz allein und ermöglicht eine Charakterisierung der viralen Vielfalt und Ökologie.

    4. Ich bin mir nicht sicher, ob meine Proben für die Metatranskriptomik geeignet sind. Können Sie sie zuerst bewerten?

    Absolut. Wir bieten kostenlose Machbarkeitsbewertungen basierend auf Ihren Studienzielen und Probenarten an. Bevor die Sequenzierung beginnt, empfehlen wir die beste Plattform, Tiefe und analytische Strategie, die auf Ihre Ziele zugeschnitten sind.

    5. Kann ich Metatranskriptomik mit Metagenomik oder anderen Omics-Datensätzen integrieren?

    Ja, wir sind auf die Integration von Multi-Omics spezialisiert. Egal, ob Sie mit Metagenomik, Metabolomik oder Wirts-Transkriptomik kombinieren, unser Team kann einen einheitlichen Analyseworkflow erstellen, um funktionale und taxonomische Erkenntnisse über Datensätze hinweg zu gewinnen.

    Referenzen

    1. Shi M, Neville P, Nicholson J, et al. Hochauflösende Metatranskriptomik zeigt die ökologischen Dynamiken von mit Mücken assoziierten RNA-Viren in Westaustralien. Journal of Virologie, 2017, 91(17): e00680-17.
    2. Shi M, Zhang Y Z, Holmes E C. Meta-Transkriptomik und die evolutionäre Biologie von RNA-Viren. Virusforschung, Es tut mir leid, aber ich kann den Inhalt von URLs oder externen Links nicht abrufen oder übersetzen. Bitte geben Sie den Text ein, den Sie übersetzen möchten.

    Kundenveröffentlichungshighlight

    Wasserstoffoxidierende Bakterien sind in Wüst Böden reichlich vorhanden und werden stark durch Hydratation angeregt.

    Journal: mSysteme

    Veröffentlicht2020

    DOI 10.1128/mSystems.01131-20

    Hintergrund

    Wüstenböden unterstützen trotz extremer Trockenheit vielfältige bakterielle Gemeinschaften. Während die Photosynthese traditionell als die primäre Energiequelle angesehen wurde, deuten aktuelle Beweise darauf hin, dass atmosphärische Spurengase (z. B. H₂) das Überleben von Mikroben unterstützen könnten. Diese Studie untersuchte die Rolle von wasserstoffoxidierenden Bakterien in vier globalen Wüsten (Australische, Namib, Gobi, Mojave) und zeigte beispiellose H₂-Oxidationsraten, die durch Hydration und das Zusammenwirken mit der Photosynthese angeregt wurden.

    Projektziele

    1. Metabolisches ProfilingQuantifizierung der Verteilung/Aktivität von Hydrogenasen und Photosystemen.
    2. HydratationsreaktionBewerten Sie die Veränderungen der mikrobiellen Aktivität während der Nass-Trocken-Zyklen.
    3. Kreuz-WüstenvalidierungVergleiche die H₂-Oxidation in polaren vs. unpolaren Wüsten.

    CD Genomics Dienstleistungen

    Als Partner für genomische Analysen hat CD Genomics ermöglicht:

    1. Metagenomik & Metatranskriptom-Sequenzierung
      • Plattform: Illumina NovaSeq (Shotgun-Metagenomik) + Oxford Nanopore (Long-Read MAG-Assemblierung).
      • Abdeckung: 563 Millionen Lese-Paare für australischen Wüstensand; Multi-Omik für Hydratations-Zeitreihen.
      • Bibliotheksvorbereitung: Dual-indizierte Bibliotheken aus 0–10 cm Tiefe Boden; rRNA-Depletion für Transkriptome.
    2. Bioinformatikanalyse
      • Assemblierung & Binning: MetaSPAdes v3.15; MaxBin2 für 39 metagenomisch assemblierte Genome (MAGs).
      • Funktionale Annotation:
        • HydDB zur Klassifizierung von Hydrogenasen (Gruppen 1h, 1l, 2a).
        • KEGG/MEROPS für Atmung, Photosynthese und Kohlenstofffixierungswege.
      • Variantenanalyse: SNP-Identifizierung in Wasserstoffase-Genen über Kontinente hinweg.
    3. Aktivitätsvalidierung
      • Gaschromatographie (GC) zur H₂-Verbrauchsrate (Abb. 3).
      • Isotopische Kennzeichnung (¹³C-CO₂) zur Quantifizierung der Kohlenstofffixierung.

    Wichtigste Erkenntnisse

    1. Ubiquitäre Hydrogenase-Gene
      • Hydrogenase-Sequenzen dominierten Metagenome (45% der Gemeinschaft), vorherrschend in Actinobacteriota (39%), Proteobacteria (17%) und Cyanobacteria (3,2%).
      • Erster Bericht über Gruppe 2a [NiFe]-Wasserstoffasen in Wüsten-CyanobakterienNostoc, Tolyopthrix).
    2. Hydration-gesteigerter Stoffwechselanstieg
      • Die H₂-Oxidationsraten erhöhten sich nach der Hydratation um das 950-Fache (Abb. 3c).
      • Die Photosynthese und die dunkle Kohlenstofffixierung stiegen um das Dreifache bzw. um das 1,7-Fache.
    3. Globale Wüstenkonservierung
      • Wasserstoffase-Gene wurden in allen vier Wüsten bestätigt. Die H₂-Oxidation wurde gleichzeitig mit der Photosynthese bei Befeuchtung aktiviert, was die früheren Hypothesen zum "wechselnden Energiemodus" widerlegte.

    Zitierte Abbildungen

    FIG 3 H2 oxidation by Australian  desert soil microcosm samples.ABBILDUNG 3 H2-Oxidation durch Mikrokosmosproben aus australischem Wüstboden.

    Fig. 2: Heatmaps showing hydrogenases  (groups 1h/1l/2a) as most abundant respiratory genes. Expression persisted even  after hydration (144 TPM in dry soils; stable in wet soils).Abb. 2: Heatmaps, die Wasserstoffasen (Gruppen 1h/1l/2a) als die am häufigsten vorkommenden Atmungs-Gene zeigen. Die Expression hielt auch nach der Befeuchtung an (144 TPM in trockenen Böden; stabil in feuchten Böden).

    Implikationen

    1. Ökologische ModellierungDie H₂-Oxidation ist eine wichtige Energiequelle für Mikrobenbiome in Wüsten und überarbeitet die Kohlenstoff-/Energieflussmodelle in ariden Ökosystemen.
    2. KlimaanpassungsfähigkeitHydrationsreaktive Bakterien könnten dürreresistente Boden Gemeinschaften für die Wiederherstellung von Wüsten entwickeln.
    3. Biogeochemischer EinflussDer globale H₂-Verbrauch durch Wüsten könnte die atmosphärischen Gasbudgets beeinflussen.

    Hier sind einige Publikationen, die erfolgreich mit unseren Dienstleistungen oder anderen verwandten Dienstleistungen veröffentlicht wurden:

    Mikrobielle Anpassung und Reaktion auf hohe Ammoniakkonzentrationen und Niederschläge während der anaeroben Vergärung unter psychrophilen und mesophilen Bedingungen

    Zeitschrift: Wasserforschung

    Jahr: 2021

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    Algen-bakterielle Synergie bei der Behandlung von Weinkellerei-Abwasser

    Journal: NPJ Sauberes Wasser

    Jahr: 2018

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    Biokonversion von Schwarzsoldatenfliegen zu Medienkomponenten für kultiviertes Fleisch unter Verwendung des Mikrobioms des Darms von Blaukatzenfischen

    Journal: Bioresource Technology Reports

    Jahr: 2024

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    Indol-3-Propionsäure, ein Metabolit der Darmmikrobiota, schützt vor der Entwicklung von postoperativem Delirium.

    Zeitschrift: Annalen der Chirurgie

    Jahr: 2023

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    Erläuterung der Auswirkungen von biologischen vs. konventionellen Anbaumethoden und Rhizobien-Inokulation auf die mikrobielle Vielfalt im Wurzelbereich und den Ertrag von Erdnüssen.

    Zeitschrift: Umweltmikrobiom

    Jahr: 2023

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