Was ist Genotypisierung?

Genotypisierung, ein unverzichtbares Werkzeug in der modernen Genetik, bietet Einblicke in die genetische Zusammensetzung eines Individuums. Dieser Prozess umfasst die Identifizierung genetischer Variationen im Genom eines Organismus und liefert entscheidende Informationen für verschiedene Bereiche, einschließlich Medizin, Landwirtschaft und Forschung.

Einzelne Nukleotid-Polymorphismen (SNPs)

Eines der grundlegenden Elemente der Genotypisierung ist Einzelne Nukleotid-Polymorphismen (SNPs), die Variationen in einer einzelnen Nukleotidbase innerhalb der DNA-Sequenz sind. Diese SNPs dienen als genetische Marker und spielen eine wichtige Rolle beim Verständnis genetischer Vielfalt und Krankheitsanfälligkeit.

Einzelne Nukleotid-Polymorphismen (SNPs) sind Variationen in einer einzelnen Nukleotidbasis im Genom, die Substitutionen, Insertionen, Deletionen umfassen und genetische Marker bilden. Theoretisch könnte jeder SNP-Locus vier verschiedene Varianten aufweisen, in der Praxis treten jedoch nur zwei Typen auf: Transitionen und Transversionen, im Verhältnis von 2:1. SNPs am häufigsten in CG-Sequenzen erscheinen, wobei C oft zu T konvertiert, aufgrund der durch Methylierung induzierten Deaminierung von Cytosin zu Thymin.

SNPs werden allgemein als Varianten mit einer Häufigkeit von mehr als 1 % betrachtet. Im menschlichen Genom befindet sich ungefähr alle 1000 Basen ein SNP, was insgesamt etwa 3 Millionen SNPs im menschlichen Genom ergibt. Folglich dienen SNPs als genetische Marker der dritten Generation, die potenziell mit verschiedenen phänotypischen Unterschieden, Arzneimittelreaktionen oder Krankheitsanfälligkeiten assoziiert sind.

SNPs, abhängig von ihrem Standort innerhalb von Genen, können in kodierende Regionen, nicht-kodierende Regionen und intergenische Regionen kategorisiert werden. Während synonyme SNPs In kodierenden Regionen verändern sich die Proteinsequenzen nicht, nicht-synonyme SNPs führen zu Veränderungen in der Aminosäuresequenz. SNPs außerhalb der kodierenden Regionen können dennoch die Genexpression beeinflussen und Prozesse wie Spleißen, Bindung von Transkriptionsfaktoren, mRNA-Abbau oder nicht-kodierende RNA-Sequenzen beeinflussen, was zu expressionsbezogenen Einzel-Nukleotid-Polymorphismen (ESNPs) führt.

Die Hochdurchsatz-Sequenzierungs- und Langsequenzierungsplattformen von CD Genomics ermöglichen eine robuste Analyse der Genotypisierung. Dieser fortschrittliche Sequenzierungsansatz erlaubt die Erkennung von häufigen und seltenen Einzel-Nukleotid-Polymorphismen (SNPs), Kopienzahlvariationen (CNVs) und anderen genetischen Variationen und bietet wertvolle Einblicke in die krankheitsbezogene Genetik, individualisierte Gesundheitsmanagement, Zucht usw.

Einfügungen und Löschungen

Abgesehen von SNPs, Genotypisierung beinhaltet auch das Erkennen von Einfügungen und Löschungen (INDELs) im Genom. INDELs sind Variationen, bei denen Nukleotidbasen entweder zur DNA-Sequenz hinzugefügt oder daraus entfernt werden, was zur genetischen Vielfalt und zu Krankheitsphänotypen beiträgt.

Wofür wird die Genotypisierung verwendet?

Die Genotypisierung findet in verschiedenen Bereichen Anwendung:

  • Klinische Forschung: Sie spielt eine entscheidende Rolle bei der Identifizierung genetischer Prädispositionen für Krankheiten, der Entschlüsselung der Komplexität der Populationsgenetik und der Entwicklung gezielter Therapien. Zum Beispiel in HLA-Typisierung, Genotypisierung Tests bieten eine erhöhte Sensitivität und Genauigkeit im Vergleich zu traditionellen Methoden, wodurch die Erkennung einer breiteren Palette von Subtypen ermöglicht wird.
  • Klinische Diagnostik: Genotypisierung ist unerlässlich für die Diagnose genetischer Erkrankungen, die Prognose von Krankheitsrisiken und die Anpassung von Behandlungsplänen für individuelle Patienten, wodurch eine neue Ära der personalisierten Medizin eingeläutet wird.
  • Landwirtschaft: Innerhalb der Landwirtschaft, Genotypisierung hat eine entscheidende Bedeutung für Zuchtprogramme, Initiativen zur Verbesserung von Pflanzen und das Verständnis der Pflanzen-genetik. Durch die Integration von Daten zur genomischen Variation mit phänotypischen Informationen ebnen Wissenschaftler den Weg für präzise Zucht- und molekulare Designstrategien. Diese Integration ermöglicht genauere genetische Vorhersagen in Bezug auf Merkmale wie Qualität, Ertrag und Stressresistenz, was letztendlich zur Entwicklung von widerstandsfähigen, ertragreichen Pflanzenvarianten führt.

Wie verschiedene Genotypisierungsverfahren funktionieren?

  • Genotypisierung durch PCR

Die Polymerase-Kettenreaktion (PCR) ist eine weit verbreitete Technik, die spezifische DNA-Sequenzen amplifiziert und so die Detektion von SNPs, INDELs und anderen genetischen Variationen ermöglicht.

KASP (Kompetitive Allele-spezifische PCR) ermöglicht die präzise Bestimmung von Doppelallelen für SNPs und InDels an gezielten Loci in verschiedenen genomischen DNA-Proben.

Im Bereich von SNP-GenotypisierungDie KASP-Technologie hat seit ihrer Einführung aufgrund ihrer außergewöhnlichen Flexibilität, Genauigkeit und Kosteneffizienz schnell den Markt dominiert. Sie hat sich als ein entscheidendes Hilfsmittel zur Identifizierung von Genressourcen, zur Durchführung von Populationsanalysen und zur Unterstützung verschiedener Forschungsprojekte etabliert.

  • DNA-Mikroarrays

Mikroarrays ermöglichen hochdurchsatzfähige Genotypisierung, indem sie genetische Variationen über Tausende von DNA-Sequenzen gleichzeitig nachweisen.

DNA-Mikroarray sind neuartige Werkzeuge zur Erkennung von Variationen in DNA-Sequenzen. Sie nutzen die spezifische Hybridisierung von Ziel-DNA mit dicht angeordneten Oligonukleotid-Sonden auf festen Trägern, um SNP-Allele zu identifizieren.

Vorteile: Hohe Durchsatzrate und Vielseitigkeit, die verschiedene Genotypisierungszwecke und Probengrößen berücksichtigt.

Nachteile: Abhängig von der Wahl der Mikroarray-Plattform und den damit verbundenen Kosten.

  • TaqMan-Fluoreszenzsondenmethode

TaqMan-Technologie, entwickelt von ABI, ist eine SNP-Genotypisierungstechnik. Während der PCR binden zwei mit unterschiedlichen Fluorophoren markierte Sonden spezifisch an verschiedene Allele. Während die DNA-Polymerase verlängert, wird das Reporter-Fluorophor abgespalten, was Fluoreszenz emittiert. SNP-Genotypen werden basierend auf den detektierten Fluoreszenzsignalen bestimmt.

Vorteile: Einfache Bedienung, hohe Genauigkeit und leichte Interpretation.

Nachteile: Zeitaufwändige Sonden-Synthese, typischerweise an ABI ausgelagert.

  • MassARRAY SNP-Genotypisierung

Durch den Einsatz der Massenspektrometrie identifiziert diese Technik präzise Variationen von Einzel-Nukleotid-Polymorphismen (SNP) im Genom. MassARRAY-Genotypisierung nutzt die MALDI-TOF (Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time-of-Flight) Massenspektrometrie, die einzelne Basen anhand ihrer Masse untersucht. Das zugrunde liegende Prinzip dieser Analyse ist die Erkennung von Basenvariationen an spezifischen SNP-Stellen durch das Erkennen der Massendifferenz einzelner Basen. Der nachweisbare Massenbereich reicht von etwa 4500 bis 9000 Da (Dalton).

Vorteile

Hohe Durchsatzrate: Ermöglicht bis zu 40 Multiplexe in einem einzigen Röhrchen, was eine effiziente Verarbeitung erleichtert.

Kosten-Effektivität: Beseitigt die Notwendigkeit für Modifikationen wie fluoreszierende Sonden und senkt somit die Gesamtkosten.

Kurze Zykluszeit: Von der DNA-Umwandlung bis zur Datenberichterstattung kann der Prozess innerhalb von 8-10 Stunden abgeschlossen werden, was schnelle Ergebnisse gewährleistet.

Hohe Tippgenauigkeit und Sensitivität: Liefert präzise und empfindliche SNP-Typisierungsergebnisse.

Nachteile

Spezielle Instrumentierung erforderlich: Erfordert spezialisierte Instrumentierung für die Umsetzung.

Begrenzter Erkennungsbereich: Unfähig, unbekannte Mutationen zu identifizieren, was seine Nützlichkeit in bestimmten Kontexten einschränkt.

Proben- und Loci-Anforderungen: Legt spezifische Kriterien für Proben und Loci pro Test fest, die die Flexibilität und Skalierbarkeit einschränken können.

  • Multiplex-SNaPshot-Detektionsmethode

SNaPshot-Technologieauch bekannt als Minisequenzierung, ähnelt der Sequenzierung der ersten Generation. In einem Reaktionssystem, das DNA-Polymerase, vier fluoreszenzmarkierte ddNTPs und Primer unterschiedlicher Länge neben SNP-Loci enthält, wird die Verlängerung nach der Einfügung eines einzelnen Nukleotids beendet.

Vorteile: Flexibel, ermöglicht das Design von Erweiterungsprimern unterschiedlicher Länge für die Genotypisierung mehrerer SNPs in einer einzigen Reaktion.

Nachteile: Höhere Kosten.

  • Genotypisierung durch Sequenzierung

Next-Generation-Sequenzierung Plattformen bieten umfassende genomische Daten, die die Identifizierung von SNPs, INDELs und strukturellen Variationen ermöglichen.

Viele Forscher entscheiden sich weiterhin für die direkte Sequenzierungsmethode, wenn sie SNP-Loci untersuchen. Das Sanger-Sequenzierungsprinzip, auch bekannt als Dideoxy-Terminierungsverfahren, erweitert die Nukleotidsequenz treu entlang des Matrizenstrangs. SNP-Vorkommen zeigen sich als Spitzenmuster in den Sequenzierungsergebnissen.

Hochdurchsatz-SNP-Detektionsmethoden umfassen hauptsächlich Whole-Genome-Resequenzierung (WGS)SNP-Mikroarrays und vereinfachte Genomsequenzierung.

Whole-Genome-ResequenzierungWGS) bietet eine umfassende Abdeckung von Mutationsstellen im Genom, hat jedoch hohe Sequenzierungskosten. SNP-Mikroarrays sind durch die Anzahl der Detektionsmarker eingeschränkt und können ausschließlich vorhandene Mutationen identifizieren. Im Gegensatz dazu verfügt die vereinfachte Genomsequenzierungstechnologie über eine größere Anzahl von Detektionsstellen und ist nicht auf bestimmte Arten beschränkt, jedoch bleibt die Genomabdeckung mit etwa 2% relativ niedrig.

Gezielte Erfassungssequenzierung und niedrigabdeckende Ganzgenom-Nachsequenzierung (LcWGS) Präsentieren Sie einen überzeugenden Ansatz zur Maximierung des Preis-Leistungs-Verhältnisses beim Tippen, während eine präzise Auswahl sichergestellt wird. Dieser Ansatz vertieft sich effizient in die Genressourcen sowohl auf der Ebene der Molekularbiologie als auch der Züchtungsnutzung und fördert somit Fortschritte in den molekularen Züchtungspraktiken.

Vorteile: Die direkte Sequenzierung ist die intuitivste und genaueste. SNP-Genotypisierung Methode, geeignet zur Entdeckung unbekannter SNP-Loci und zur Erkennung kleiner Stichprobengrößen oder einer begrenzten Anzahl polymorpher Stellen.

Nachteile: Begrenzter Durchsatz und relativ hohe Kosten. Mit der rasanten Entwicklung der Hochdurchsatz-Sequenzierungstechnologien belebt jedoch selbst die Hochdurchsatz-Sequenzierung von gezielten Fragmenten oder gesamten Genomen die direkte Sequenzierungsmethode wieder.

Fazit

Genotypisierung revolutioniert unser Verständnis von Genetik und deren Anwendungen in verschiedenen Disziplinen. Von der personalisierten Medizin bis hin zu landwirtschaftlichen Fortschritten ermöglicht das Genotyping Forschern und Praktikern, fundierte Entscheidungen basierend auf dem genetischen Profil eines Individuums oder einer Population zu treffen.

Fragen & Antworten

  • Wie trägt die Genotypisierung zur personalisierten Medizin bei?

Die Genotypisierung ermöglicht es Klinikern, genetische Variationen zu identifizieren, die mit der Anfälligkeit für Krankheiten und der Reaktion auf Medikamente verbunden sind, und erleichtert so personalisierte Behandlungsstrategien, die auf einzelne Patienten zugeschnitten sind.

  • Welche Rolle spielt die Genotypisierung bei der Verbesserung von Pflanzen?

In der Landwirtschaft unterstützt die Genotypisierung Züchter dabei, wünschenswerte genetische Merkmale zu identifizieren und beschleunigt die Entwicklung von Pflanzen mit verbessertem Ertrag, Krankheitsresistenz und Nährstoffgehalt.

  • Was sind die Einschränkungen von Genotyping-Technologien?

Während Genotypisierungstechnologien bieten wertvolle Einblicke in genetische Variationen, können jedoch Einschränkungen bei der genauen Erkennung seltener oder komplexer genetischer Varianten haben. Darüber hinaus sind ethische Überlegungen hinsichtlich Datenschutz und Einwilligung entscheidend, wenn genetische Informationen für Forschungs- oder klinische Zwecke genutzt werden.

Nur für Forschungszwecke, nicht zur klinischen Diagnose, Behandlung oder individuellen Gesundheitsbewertung bestimmt.
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