mRNA-Sequenzierung: mRNA-Sequenz, experimenteller Arbeitsablauf und Anwendungen
Einführung in die mRNA-Sequenzierung
Messenger-RNA-Sequenzierung (mRNA-Seq) ist eine wichtige Hochdurchsatztechnik, die verwendet wird, um die Genexpression im Detail zu analysieren. Dieser Ansatz wird umfassend genutzt, um Muster der Genexpression, Transkriptvarianten und RNA-Modifikationen zu untersuchen. Durch die Sequenzierung der zellulären mRNA liefert mRNA-Seq tiefgehende Einblicke in Veränderungen der Genaktivität unter verschiedenen physiologischen und pathologischen Bedingungen. Solche Erkenntnisse sind von unschätzbarem Wert für Forscher, die die komplexen Mechanismen der Regulation der Genexpression entschlüsseln möchten. mRNA-Seq spielt eine wichtige Rolle in mehreren wissenschaftlichen Bereichen, einschließlich Epigenetik, Onkologie, Pharmakologie und personalisierter Medizin.
Das grundlegende Prinzip von mRNA-Seq besteht darin, zu nutzen Hochdurchsatz-Sequenzierungstechnologien eine umfassende quantitative Bewertung aller Gene innerhalb eines Transkriptoms durchzuführen. Dieses Verfahren bietet detaillierte Einblicke in die Genexpressionsniveaus, alternative Spleißereignisse, transkriptomische strukturelle Veränderungen und die funktionale Bedeutung von nicht-kodierenden RNAs. Im Vergleich zu traditionellen Mikroarray-Methoden zeigt mRNA-Seq eine überlegene Sensitivität und erzeugt ein reichhaltigeres Datenbild, das in der Lage ist, neuartige Transkripte und alternative Spleißformen aufzudecken. Daher ist mRNA-Seq ein unverzichtbares Werkzeug für die komplexe Erforschung der Genfunktion und regulatorischer Netzwerke.
Experimenteller Arbeitsablauf:
Das Verfahren für mRNA-Seq umfasst mehrere wesentliche Phasen:
1. RNA-Extraktion und -ReinigungDer Prozess beginnt mit der Extraktion von totaler RNA aus zellulären oder Gewebeproben. Da ribosomale RNA (rRNA) über 90 % des gesamten RNA-Gehalts ausmacht, werden Routinemethoden wie die Oligo(dT)-Perlenanreicherung angewendet, um spezifisch mRNA zu isolieren, die durch PolyA-Schwänze gekennzeichnet ist. Die Verbesserung der mRNA-Spezifität an diesem Punkt ist entscheidend, um die Effizienz und Präzision des Experiments zu steigern.
2. RNA-Fragmente und Reverse TranskriptionIsolierte mRNA wird anschließend in kleinere Stücke fragmentiert, normalerweise unter Verwendung chemischer Methoden wie Erhitzen oder enzymatischer Verdauung. Nach der Fragmentierung erfolgt die reversen Transkription mit reverser Transkriptase, um mRNA-Fragmente in komplementäre DNA (cDNA) umzuwandeln.
3. cDNA-BibliothekskonstruktionDas resultierende cDNA wird modifiziert, indem spezifische Adaptersequenzen angefügt werden, die für die Sequenzierung erforderlich sind. Je nach Forschungsschwerpunkt kann eine strangspezifische Bibliothekskonstruktion verwendet werden, die besonders wichtig ist, um spezifische Transkriptvarianten zu analysieren.
Schematische Darstellung der Unterschiede im Bibliotheksaufbau zwischen konventionellem und 3'-DGE mRNA-Sequenzieren. (Xiong, Y., u. a.., 2017)
4. Hochdurchsatz-SequenzierungDie cDNA-Bibliothek wird dann einer Hochdurchsatz-Sequenzierung unterzogen, die verwendet wird Plattformen wie Illumina, PacBio oder Oxford Nanopore, um die Sequenzinformationen der mRNA-Fragmente zu erfassen.
5. DatenanalyseEine umfassende Analyse der Sequierungsdaten folgt, die Ausrichtung, Annotation und Interpretation umfasst, um Einblicke in die Genexpressionsniveaus, Spleißvariationen und Transkriptvielfalt zu gewinnen. Diese Analyse wird von wesentlichen Prozessen wie Qualitätskontrolle, Daten-Normalisierung und Analyse der differentiellen Expression begleitet.
Technische Übersicht
mRNA-Seq ist eine leistungsstarke Hochdurchsatztechnologie mit erheblichen Vorteilen, aber auch einigen Herausforderungen. Die Aufrechterhaltung der RNA-Purität und -Integrität ist entscheidend, um Abbau oder Kontamination zu vermeiden, die die Ergebnisse beeinträchtigen könnten. Die Verwendung von hochwertigen RNA-Proben ist unerlässlich, um präzise Sequenzierungsdaten zu erhalten. Die Zuverlässigkeit der Daten hängt von einer sorgfältigen Berücksichtigung von Faktoren wie Replikaten, Konfigurationen der Kontrollgruppe und Probenauswahl ab. Darüber hinaus ist die Wahl der angemessenen Sequenzierungstiefe entscheidend; eine unzureichende Tiefe könnte Transkripte mit geringer Häufigkeit übersehen, während eine übermäßige Tiefe zu unnötigen Kosten führen kann. Die Daten-Normalisierung ist entscheidend für Vergleiche zwischen verschiedenen Proben und hilft, Verzerrungen aufgrund von Variationen in der Sequenzierungstiefe zu korrigieren.
Zusammenfassend bietet mRNA-Seq wertvolle Einblicke in die Genexpression. Um jedoch zuverlässige Ergebnisse zu erzielen, sind sorgfältige Planung und Optimierung sowohl der experimentellen Methoden als auch der Datenanalyse erforderlich.
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Was ist die mRNA-Sequenz?
mRNA ist ein einzelsträngiges RNA-Molekül, das von DNA transkribiert wird und genetische Informationen von DNA zu Ribosomen transportiert, wo die Proteinsynthese im Zytoplasma stattfindet. Diese Sequenz kodiert die Anweisungen für die Proteinproduktion, und ihre Struktur ist entscheidend für die Stabilität und die Effizienz der Translation der Genexpression in die entsprechenden Proteine.
Detaillierte Struktur von eukaryotischer mRNA
1. 5'-Cap-Struktur:
- In eukaryotischen Zellen besitzt mRNA eine 5'-Kappe, die 7-Methylguanosin (m7G) enthält. Diese Kappe schützt mRNA vor Exonuklease-Abbau und unterstützt die Bindung von Ribosomen zur Initiierung der Translation. Darüber hinaus beteiligt sich die Kappenstruktur an der Regulation der Genexpression und erleichtert den Transport von mRNA vom Zellkern ins Zytoplasma.
Cap-Struktur von eukaryotischer mRNA. (Jia, Longfei, et al., 2021)
1. 5' untranslatierte Region (5' UTR):
- Die 5' UTR befindet sich am 5' Ende der mRNA und erstreckt sich vom Transkriptionsstartpunkt bis kurz vor das Startcodon. Sie spielt eine entscheidende Rolle bei der Initiation der Translation, indem sie der kleinen ribosomalen Untereinheit hilft, die mRNA abzuscannen, um das Startcodon zu finden.
2. Offene Leserahmen (ORF):
- Dies ist der kodierende Bereich der mRNA, der die Sequenz zwischen dem Startcodon (AUG) und dem Stoppcodon umfasst, das in Protein übersetzt wird.
3' unübersetzte Region (3' UTR):
- Fand sich stromabwärts des ORF, zwischen dem Stoppcodon und dem Poly-A-Schwanz. Die 3' UTR enthält regulatorische Sequenzen, die die Stabilität, Lokalisierung und Übersetzungseffizienz der mRNA steuern. Sie umfasst die Polyadenylierungssignalsequenz (AAUAAA), die für die Hinzufügung des Poly-A-Schwanzes essentiell ist.
4. Poly-A-Schwanz:
- Der Poly-A-Schwanz ist eine Strecke von Adenin-Nukleotiden, die am 3'-Ende der mRNA hinzugefügt wird und typischerweise aus 80 bis 250 Resten besteht. Der Schwanz trägt zur Stabilisierung der mRNA bei, schützt sie vor Abbau und reguliert den Beginn der Translation. Poly-A-bindende Proteine (PABP) binden an den Poly-A-Schwanz und unterstützen den Schutz der mRNA.
Schematische Darstellung einer synthetischen mRNA. (Jia, Longfei, et al., 2021)
Rolle und Unterschiede zwischen prokaryotischer und eukaryotischer mRNA
mRNA spielt eine zentrale Rolle bei der Genexpression sowohl in prokaryotischen als auch in eukaryotischen Organismen, obwohl sich strukturelle und posttranskriptionale Modifikationen zwischen den beiden erheblich unterscheiden.
Hauptunterschiede zwischen prokaryotischer und eukaryotischer mRNA:
| Merkmal | Prokaryotische mRNA | Eukaryotische mRNA |
|---|---|---|
| 5' Cap-Struktur | Abwesend | Präsent (7-Methylguanosin-Kappe, m7Gppp) |
| Poly-A-Schwanz | Abwesend (kann unter bestimmten Bedingungen kürzere Schwänze haben) | Präsent (typischerweise 80-250 Adenin-Reste) |
| Untranslatierte Regionen (UTRs) | Kurz, generell nicht in die Regulierung involviert. | Präsent (einschließlich 5'UTR und 3'UTR, beteiligt an der Regulation) |
| Introns und Exons | Keine Introns (nur Exons) | Enthält Introns (nicht-codierend) und Exons (codierend), die ein Spleißen erfordern. |
| Posttranskriptionale Verarbeitung | Minimale Verarbeitung (keine Bearbeitung oder Kappen) | Umfangreiche Modifikationen (Kappung, Spleißen und Polyadenylierung) |
| Stabilität | Relativ kurzlebig (Minuten bis Stunden) | Stabiler, reguliert durch die 5'-Kappe und den 3'-Poly-A-Schwanz |
| Zeitpunkt der Übersetzung | Kann sofort nach der Transkription beginnen. | Die Translation beginnt erst nach der mRNA-Prozessierung und dem Export ins Zytoplasma. |
| Lokalisierung von Transkription und Übersetzung | Tritt im Zytoplasma auf (kein Zellkern) | Transkription im Zellkern, Translation im Zytoplasma |
| Interaktion mit Ribosomen | Bindet direkt Ribosomen nach der Transkription für die Translation. | Erfordert zytoplasmatischen Export und 5'-Cap-Ribosomen-Interaktion für die Translation. |
Diese Unterscheidung hebt die komplexen regulatorischen Mechanismen und strukturellen Komplexitäten hervor, die die mRNA-Funktionalitäten in Prokaryoten und Eukaryoten unterscheiden und evolutionäre Anpassungen in der Kontrolle der Genexpression widerspiegeln.
Was sagt Ihnen mRNA-Seq?
mRNA-Seq ist eine transformative Hochdurchsatztechnik, die sorgfältig zellspezifische mRNA-Sequenzen entschlüsselt, um die Komplexität der Genexpression und Transkriptomik zu ergründen. Diese Methodik bietet tiefgreifende Einblicke in mehrere kritische Dimensionen:
GenexpressionsquantifizierungmRNA-Seq ermöglicht die genaue Messung der Genexpressionsniveaus über eine Vielzahl von Proben hinweg und ermöglicht so die Identifizierung von Genen, die unter bestimmten biologischen Bedingungen unterschiedlich reguliert sind. Eine wertvolle Anwendung besteht darin, die mRNA-Expressionsprofile von Tumor- und Normalzellen zu vergleichen, um Gene zu erkennen, die an der Onkogenese beteiligt sind.
Transkriptvarianten und IsoformenNeben der bloßen Quantifizierung der Genexpression ist mRNA-Seq in der Lage, verschiedene Transkriptvarianten, die durch alternatives Spleißen erzeugt werden, zu unterscheiden, von denen jede potenziell funktionell unterschiedliche Proteinisoformen kodiert. Eine solche Analyse unterstreicht die Bedeutung der Technik bei der Erforschung der transkriptomischen Komplexität und funktionellen Vielfalt.
Spleißen und posttranskriptionale DynamikDie Technologie zeichnet sich durch die Charakterisierung von Spleißmustern und posttranskriptionalen Modifikationen wie Methylierung aus, die einen tiefgreifenden Einfluss auf die Genexpression haben können. Die Identifizierung abweichender Spleißmuster, die häufig mit genetischen Störungen assoziiert sind, veranschaulicht den Nutzen von mRNA-Seq zur Aufklärung neuer Krankheitsmechanismen.
Identifizierung neuer Gene und TranskriptemRNA-Seq spielt eine entscheidende Rolle bei der Entdeckung zuvor nicht annotierter Gene und neuartiger Transkripte, insbesondere bei unterforschten Arten oder Zelltypen. Dies verbessert unser genomisches Verständnis und bietet neue Einblicke in biologische Funktionen und Krankheitswege.
Anwendungen von mRNA-Seq
Die Anpassungsfähigkeit von mRNA-Seq findet in mehreren Forschungsbereichen Relevanz:
Genexpressionsanalyse: Durch die Bewertung von Expressionsänderungen unter verschiedenen Bedingungen informiert mRNA-Seq über genregulatorische Mechanismen. Es ist besonders effektiv in der Krankheitsforschung, wo es hilft, Expressionsverschiebungen zu identifizieren, die für Pathologien relevant sind, und potenzielle therapeutische Ziele zu erkennen.
Krebsgenomik: Innerhalb der Onkologie ist mRNA-Seq entscheidend, um Unterschiede in der Genexpression zwischen malignen und normalen Geweben hervorzuheben. Dieser Ansatz hilft dabei, Gene zu entdecken, die für die Tumorentwicklung und -progression entscheidend sind, und identifiziert wichtige Biomarker und therapeutische Ziele.
Präzisionsmedizin: mRNA-Seq bildet die Grundlage für die Fortschritte in der personalisierten Medizin, bei der individuelle mRNA-Expressionsprofile die Entwicklung gezielter therapeutischer Strategien unterstützen – entscheidend in der Krebsbehandlung zur Optimierung der Arzneimittelauswahl und therapeutischer Regime.
Spleiß- und Transkriptomforschung: Die Technik ist entscheidend für die Untersuchung von Spleißmustern, insbesondere angesichts der Assoziation vieler Krankheiten, insbesondere genetischer, mit Spleißunregelmäßigkeiten. mRNA-Seq liefert wesentliche Einblicke für frühe diagnostische und therapeutische Innovationen.
Zusammenfassend bietet mRNA-Seq umfassende Einblicke in die Dynamik der Genexpression, Transkript-Isoformen, Spleißereignisse und posttranskriptionale Modifikationen. Dies macht es zu einem unverzichtbaren Werkzeug in der Grundlagenforschung, der Untersuchung von Krankheitsmechanismen, personalisierten Therapieansätzen und der Arzneimittelentwicklung. Die Nutzung von mRNA-Seq bereichert unser Verständnis von genregulatorischen Netzwerken und legt eine solide wissenschaftliche Grundlage für Durchbrüche in der Krankheitsdiagnose, -behandlung und im pharmazeutischen Fortschritt.
Was ist der Unterschied zwischen RNA-Seq und mRNA-Seq?
RNA-Sequenzierung (RNA-Seq) und mRNA-Seq sind zwei verbreitete genomische Techniken, die zur Analyse von zellulären Transkriptomen verwendet werden, wobei jede ihre eigenen Schwerpunkte hat. Im Folgenden werden die wesentlichen Unterschiede zwischen diesen Methoden erläutert:
| Funktionen | Gesamt-RNA-Seq (RNA-Seq) | mRNA-Seq |
|---|---|---|
| Zielsequenzierung | Umfasst alle RNA-Typen (sowohl kodierende als auch nicht-kodierende) wie mRNA, rRNA, tRNA, miRNA usw. | Zielt hauptsächlich auf kodierende RNA ab, insbesondere mRNA, und schließt oft andere RNA-Typen aus. |
| Probenvorbereitungsmethoden | Beinhaltet die Depletion von rRNA, gefolgt von der Anreicherung oder Selektion verschiedener RNA-Typen. | Verwendet Poly(A)-Anreicherungstechniken, um mRNA gezielt zu isolieren und rRNA effektiv zu entfernen. |
| Anwendungsbereich | Bietet umfassende Transkriptomdaten, einschließlich der Analyse von sowohl kodierender als auch nicht-kodierender RNA. | Fokussiert auf die Analyse der Genexpression, ideal geeignet für Studien zu mRNA und ihren Ausdrucksvariationen. |
| Empfindlichkeit von Sequenzierungsdaten | Hohe Empfindlichkeit für nicht-kodierende RNA (wie lncRNA und miRNA). | Fokussierter auf mRNA und bietet tiefere Einblicke in die kodierenden Regionen. |
| Musteranforderung | Erfordert größere Probenmengen aufgrund der Sequenzierung aller RNA-Typen, was zu erheblichen Datenmengen führt. | Benötigt kleinere Probenmengen und erreicht eine höhere Sequenzierungstiefe durch mRNA-Anreicherung. |
| Kosten | Höhere Kosten aufgrund umfangreicher Datenanforderungen und Rechenressourcen. | Geringere Kosten, da es auf die Sequenzierung angereicherter mRNA beschränkt ist und weniger Daten erzeugt. |
| Analytische Ergebnisse | Ermöglicht die Analyse aller Transkripte, sowohl kodierende als auch nicht kodierende, die sich zur Entdeckung neuer Transkripte eignen. | Analysiert hauptsächlich kodierende RNA, die für Studien zur Genexpression von unschätzbarem Wert ist, insbesondere in der Krankheitsforschung. |
| Angemessene Szenarien | Geeignet für das Verständnis vollständiger Transkriptomdetails, einschließlich nicht-kodierender RNA und posttranskriptionaler Modifikationen. | Behandelt hauptsächlich die Genexpression und Transkriptvariationen, die insbesondere in der Biomarkerforschung nützlich sind. |
Detaillierter Vergleich:
Ziel-RNA-Typen:
- Gesamt-RNA-SeqEngagiert sich mit einer Vielzahl von RNA-Molekülen innerhalb einer Probe, ideal für umfassende transkriptomische Untersuchungen.
- mRNA-SeqExklusiv auf mRNA abgestimmt, optimiert für Studien zur Genexpression und zu regulatorischen Mechanismen.
Probenvorbereitungs- und Anreicherungsmethoden:
- Gesamt-RNA-SeqTypischerweise beginnt es mit der Entfernung von rRNA, um die Ressourcenzuteilung für das Sequenzieren zu optimieren.
- mRNA-SeqNutzt die Poly(A)-Selektion, um mRNA anzureichern und eine höhere Sequenzierungstiefe mit minimalem Material sicherzustellen.
Anwendbare Forschungsbereiche:
- Gesamt-RNA-SeqGeeignet für tiefgehende transcriptomische Erkundungen, insbesondere im Bereich nicht-kodierender RNA, Spleißvarianten und Modifikationen.
- mRNA-Seq: Ausgerichtet auf die Analyse der Genexpression, die Quantifizierung von Transkripten sowie die Untersuchung von Regulationsmechanismen und Krankheitsgenen.
Kosten und Datenvolumen:
- Total RNA-SeqErzeugt erhebliche Datenmengen, die beträchtliche Kosten verursachen – oft sind 100–200 Millionen Lesevorgänge pro Probe erforderlich.
- mRNA-SeqÖkonomisch rentabler mit weniger Datenproduktion, oft erforderlich sind 25–50 Millionen Reads pro Probe, besonders vorteilhaft bei begrenztem Ausgangsmaterial.
Auswahl zwischen mRNA-Seq und Total RNA-Seq:
Die Entscheidung, ob total RNA-Seq oder mRNA-Seq verwendet werden soll, sollte mit den Forschungszielen und experimentellen Einschränkungen übereinstimmen:
- Wählen Sie aus Total RNA-Seq für umfassende Analysen aller RNA-Typen, insbesondere bei der Zielsetzung von nicht-kodierenden RNAs oder umfangreicher transkriptomischer Charakterisierung.
- Wählen mRNA-Seq für Studien, die sich auf die Genexpression konzentrieren, insbesondere auf mRNA-basierte Analysen, unter Berücksichtigung begrenzter Proben- und Budgetbeschränkungen.
Beide Methoden bieten unterschiedliche Vorteile und Einschränkungen, was eine sorgfältige Bewertung des Stichprobentyps, der Forschungsziele, der finanziellen Ressourcen und der gewünschten Analysevertiefung vor der Durchführung erforderlich macht.
Referenzen:
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