BSA (Bulk-Segregant-Analyse), auch als Hybridgruppenanalyse bezeichnet, ist eine schnelle und einfache Methode zur Lokalisierung von Merkmalen, die in den letzten Jahren entstanden ist. Eine der herausragenden Eigenschaften von BSA ist die Pool-Sequenzierung der Nachkommen von zwei extremen Merkmalen. Allerdings, BSA ist nicht so einfach wie das Mischen von Sequenzen. In praktischen Anwendungen gibt es verschiedene Methoden, um die Unterschiede in den Populationen und im experimentellen Design zu beheben.
BSA (Bulked Segregant Analysis), ursprünglich 1991 von R.W. MICHELMORE eingeführt, hat sich als leistungsstarke Methode zur schnellen Identifizierung von Genen, die spezifische Merkmale steuern, etabliert. Das Grundprinzip besteht darin, Eltern auszuwählen, die erhebliche phänotypische Unterschiede aufweisen, um eine segregierende oder Familienpopulation zu schaffen, die dem Studium des Zielmerkmals gewidmet ist. Anschließend werden eine bestimmte Anzahl von Einzelpflanzen mit extremen Phänotypen für das Merkmal aus der segregierenden Population ausgewählt und kombiniert, um zwei DNA-"Pools" zu erstellen. Die kontrastierenden genetischen Variationen innerhalb dieser Pools weisen auf den potenziellen Kandidatenbereich hin, in dem sich das interessierende Gen oder QTL befinden könnte. Typischerweise wird die DNA beider Elternteile als Kontrolle verwendet, um die Unterschiede zwischen den beiden DNA-Pools zu vergleichen, was eine umfassende Analyse und genaue Interpretation der experimentellen Ergebnisse ermöglicht.
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Bulked-Segregant-Analyse. (Shen et al., 2022)
Gemäß der Herkunft der Zielmerkmale kann die BSA-Merkmalslokalisierung in zwei Richtungen unterteilt werden: natürliche Merkmale (QTL-seq) und künstlich mutierte Merkmale (Mutantenkarte, MutMap).
QTL-seq
QTL-seq verwendet eine Strategie, bei der Eltern mit extremen Merkmalen sorgfältig ausgewählt werden, um eine Linie zu etablieren. Die Nachkommenpopulation, die eine normale Verteilung der Zielmerkmale zeigt, wird segregiert, und Individuen, die extreme Merkmale an beiden Enden dieser Verteilung aufweisen, werden ausgewählt, um zwei äquivalente Stichprobenpools zu bilden. Diese Pools werden dann sequenziert, wobei die anschließende Analyse des SNP-Index die Identifizierung von Loci oder Regionen ermöglicht, die mit den Zielmerkmalen assoziiert sind. Primär wird diese Methode zur Identifizierung von Schlüsselfunktionsgenen verwendet, die quantitativen Merkmalen zugrunde liegen.
MutMap
MutMap umfasst die Schaffung einer familiären Population durch das Rückkreuzen von mutierten Individuen mit entweder den Eltern oder entfernt verwandten Inzuchtarten. Aus dieser segregierenden Nachkommenpopulation wird eine Teilmenge von Individuen ausgewählt, die die mutierten Merkmale aufweisen, um einen Genpool zu erzeugen. Gleichzeitig wird ein separater Genpool gebildet, der eine bestimmte Anzahl von Wildtyp-Nachkommen umfasst, um als Kontrolle für den Mutantenpool zu dienen. Die gemischten Proben aus diesen Pools werden anschließend sequenziert, und die erhaltenen Ergebnisse werden mit dem elterlichen Genom oder dem Pool von Nachkommen mit wilden Merkmalen verglichen. Durch die Untersuchung des SNP-Index werden die Loci oder Regionen, die mit den Zielmerkmalen assoziiert sind, präzise identifiziert. Diese Methode ist besonders nützlich zur Erkennung von Punktmutationen, die entweder durch chemische oder physikalische Mutagenese entstehen, und findet breite Anwendung in der Lokalisierungsforschung von Qualitätsmerkmalen.
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