Bulked-Segregant-Analyse (BSA) eine instrumentelle Herangehensweise in der genetischen Forschung, die durch das Akronym BSA bezeichnet wird. Diese Methodik beinhaltet den Aufbau einer Familie aus zwei Elternorganismen, die unterschiedliche Zielmerkmale aufweisen. Innerhalb der segregierenden Nachkommenschaftspopulation werden Individuen, die das gewünschte Merkmal zeigen, ausgewählt, um gepoolte DNA-Proben zu bilden. Diese gepoolten Proben unterziehen sich Hochdurchsatz-Sequenzierung für die Bibliotheksvorbereitung und Sequenzierung. Dieser Prozess erleichtert die Entwicklung von genomweiten Einzel-Nukleotid-Polymorphismen (SNP) und Insertionen/Löschungen (InDel) molekularen Markern.
Durch die Berechnung der Genotypfrequenzen von SNPs und InDels können Forscher Loci und Gene identifizieren, die mit dem Zielmerkmal im gesamten Genom assoziiert sind. Anschließend werden Kandidatengene einer funktionalen Annotation unterzogen, um die genetischen und molekularen Mechanismen, die das interessierende Merkmal steuern, weiter zu erhellen.
Grundlagen des BSA.
Bulked-Segregant-Analyse umfasst das tiefgehende Resequenzieren von gepoolten extremen Individuen aus segregierenden Populationen, um potenzielle genomische Intervalle zu lokalisieren. Diese Methode ist besonders effektiv für Arten mit kleinen bis mittelgroßen Referenzgenomen. Wenn Sie mehr über den BSA-Workflow erfahren möchten, können Sie auf den Artikel "BSA-seq-Technologie-Workflow."
Bulked-Segregant RNA-seq (BSR) integriert BSA mit RNA-Sequenzierung (RNA-Seq) Für eine umfassende Analyse wird in BSR die gesamte RNA separat aus zwei Gruppen von Individuen extrahiert, die extreme Merkmale in der segregierenden Population aufweisen, gefolgt von RNA-seq. Da Gene nur 1–3 % des Genoms ausmachen, ist BSR besser für Arten mit großen Genomen geeignet, wie zum Beispiel Weizen.
BSA-Workflow-Diagramm.
BSR Experimenteller Arbeitsablauf
1. Merkmalsauswahl und Populationskonstruktion
2. RNA-Extraktion und Pool-Konstruktion
3. RNA-seq Sequenzierung
4. Datenanalyse
Anwendungen von BSA und BSR
1. Anwendungen von BSA
2. Anwendungen von BSR
Vergleich von BSA und BSR
| Merkmal | BSA | BSR |
|---|---|---|
| Anwendbare Genomgröße | Klein bis mittel | Groß |
| Technologische Integration | DNA-Daten nur | RNA-Seq-Technologie |
| Lokalisierungsgenauigkeit | Hoch | Höher |
| Kosten | Niedriger | Höher |
| Datentyp | DNA-Variationsinformationen | Transkript-Ausrichtungsinformationen |
Empfehlungen
1. BevölkerungsaufbauWählen Sie Eltern mit ausgeprägten, aber einzigartigen Merkmalsunterschieden und wenigen heterozygoten Stellen aus. Vermeiden Sie übermäßige Unterschiede, um falsch-positive Ergebnisse zu minimieren, während geringe Unterschiede zu einer niedrigen Marker-Dichte führen und die Lokalisierung erschweren können.
2. Sequenzierungsprotokoll:
3. PoolbauExtrahiere DNA aus jeder Nachkommensprobe unabhängig, bevor du gleiche Mengen zusammenführst, um systematische Fehler zu vermeiden.
Fazit
BSA und BSR sind hoch effizient. genetische Analyse Methodologien, die sich an Organismen mit unterschiedlichen Genomgrößen richten. BSA erleichtert die Lokalisierung von Genen, die mit Zielmerkmalen in Verbindung stehen, unter Verwendung von DNA-Daten, während BSR RNA-seq integriert, um die Lokalisierungsgenauigkeit zu verbessern. Diese Methoden haben ein enormes Potenzial in der landwirtschaftlichen Forschung, insbesondere in der Pflanzenverbesserung und Zuchtprogrammen.
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Seit seiner Einführung hat die Bulked Segregant Analysis (BSA) die Entwicklung und Diversifizierung ihrer zugehörigen Algorithmen erlebt. Diese Methoden sind auf spezifische genetische Populationen und experimentelle Designs zugeschnitten. Zu den wichtigsten Methoden gehören der Δ (SNP-Index) Ansatz für natürliche Populationen, die MutMap-Methode für EMS-induzierte Materialien (Abe et al., 2012) und die Euclidean Distance (ED) Methode, die für Szenarien ohne elterliche Daten und nur zwei extreme Phänotyp-Pools geeignet ist (Hill et al., 2013). Die GradedPool-seq (GPS) Methode, die für große F2-Populationen und phänotypbasierte Gruppierungen (mehr als drei Gruppen) entwickelt wurde (Wang et al., 2019), sowie die QTG-seq Methode für komplexere genetische Designs (Zhang et al., 2019) sind ebenfalls bemerkenswert. Darüber hinaus wurde OcBSA entwickelt, das auf F1 segregierenden Populationen anwendbar ist, bei denen beide Elternteile hoch heterozygot sind (Zhang, L. et al., 2024). Über diese hinaus bietet der G'-Wert-Algorithmus (Magwene et al., 2011) eine weitere analytische Möglichkeit, die auf unterschiedlichen mathematischen Berechnungen basiert.
1. QTL-Analyse
Die Analyse quantitativer Merkmalsloci (QTL) ist ein klassischer genetischer Mapping-Ansatz, der sich für die Merkmalsvariation eignet, die durch natürliche Mutationen verursacht wird. Dabei werden zwei Eltern mit unterschiedlichen Phänotypen gekreuzt, um eine F2-Population zu erzeugen. Individuen mit extremen Phänotypen aus der F2-Population werden für Hochdurchsatz-Sequenzierung zusammengefasst. Unterschiede in der SNP-Häufigkeit zwischen den Pools erleichtern die Lokalisierung von QTL-Regionen, die mit den Merkmalen assoziiert sind.
2. MutMap-Analyse
MutMap wird verwendet, um rezessive Mutantengene zu kartieren, die durch EMS-Mutagenese induziert wurden. Die Methode umfasst das Kreuzen des Mutanten mit einem Wildtyp-Elternteil, um F1-Nachkommen zu erhalten, gefolgt von Selbstbefruchtung, um die F2-Generation zu erzeugen. Individuen mit mutanten-konsistenten Phänotypen werden aus der F2 für eine gepoolte Sequenzierung ausgewählt. Unterschiede in der SNP-Häufigkeit zwischen Mutanten und Wildtypen ermöglichen eine schnelle Kartierung des Mutantengens.
3. Euklidische Distanzmethode (ED)
Die Methode der euklidischen Distanz eignet sich für Arten, bei denen F2-Populationen schwer zu erstellen sind oder bei denen keine Elterninformationen verfügbar sind. Durch das Zusammenfassen extremer Phänotyp-Progeny-Individuen und die Durchführung von Hochdurchsatz-Sequenzierungen berechnen die Forscher die euklidische Distanz zwischen den Pools, um die Stärke der Marker-Eigenschafts-Assoziationen zu bewerten.
4. GradedPool-seq (GPS)
GPS erstellt F2-Populationen basierend auf phänotypischer Gruppierung und verwendet die Ridit-Methode, um SNP-Unterschiede für hochauflösende Kartierung zu vergleichen. Diese Methode ist besonders geeignet für Studien zur Variation quantitativer Merkmale und ermöglicht eine präzise Lokalisierung von genassoziierten Regionen für Merkmale.
5. G' Wert Methode
Die G'-Wert-Methode, die auf einem genetischen Segregationsmodell basiert, wird für Studien zur quantitativen Merkmalsvariation eingesetzt. Durch die Berechnung des G'-Werts aus SNP-Daten in Nachkommenschaftspools können Forscher die Stärke der Marker-Merkmal-Assoziation bewerten, was sie ideal für segregierende Populationen macht, die aus phänotypisch unterschiedlichen Elternkreuzen abgeleitet sind.
6. QTG-seq
QTG-seq kombiniert Transkriptomdaten mit BSA-Techniken, die für die Forschung zu quantitativen Merkmalsmutationen maßgeschneidert sind. Durch den Aufbau von BGFz>z-Populationen und die Durchführung von Hochdurchsatz-Sequenzierungen der Nachkommen können Forscher Kandidatengene vorhersagen und deren Funktionen untersuchen.
7. OcBSA-Methode
Der OcBSA-Ansatz ist darauf ausgelegt, die einzigartigen genetischen Herausforderungen zu bewältigen, die von Arten mit komplexen Fortpflanzungssystemen präsentiert werden, und erleichtert somit die Identifizierung und Kartierung von quantitativen Merkmalsloci.
TitelCsUFO ist an der Bildung von Blüten und Ranken bei Gurken beteiligt.
JournalTheoretische und Angewandte Genetik
Zusammenfassung
Diese Studie untersucht einen Mutanten bei Gurken, der aufgrund einer Mutation in einem Gen, das ein F-Box-Protein kodiert, ungewöhnliche Blüten- und Rankenphänotypen aufweist. Blüten und Ranken sind wichtige agronomische Merkmale, die eng mit dem Ertrag verbunden sind.
Forschungsergebnisse
1. Phänotypische Charakterisierung und genetische Analyse
Eine detaillierte phänotypische Analyse ist entscheidend für erfolgreiche genetische Studien. Der uft-Mutant weist atypische blattähnliche Strukturen an der Stelle der männlichen Blütenblätter auf (Abbildung 1). Typische Blumen besitzen fünf Kelchblätter und fünf Blütenblattlappen (Abbildung 1-A2), während die Blüten des uft-Mutanten bis zu 13 Fortpflanzungsstrukturen aufweisen, einschließlich Kelchblätter und blattähnliche Organe (Abbildung 1-B2). Darüber hinaus zeigen die Staubblätter und Fruchtblätter des uft-Mutanten eine schlechte Ko-Entwicklung (Abbildungen 1-B5, B6), und es gibt abnormale Entwicklungen in den Kelchblättern, Blütenblättern und Staubblattanlagen der männlichen Blüten (Abbildung 1-B7). Über die floral Anomalien hinaus wachsen bei den weiblichen Blüten des uft-Mutanten blattähnliche Strukturen am Blütenstiel (Abbildung 1-B4). Bei den Mutanten zeigen auch die Ranken Abnormalitäten, wobei ihre Spitzen durch blattähnliche Strukturen ersetzt sind (Abbildung 1-B3).
Abbildung 1Phänotypischer Vergleich zwischen Wildtyp (A) und uft-Mutant (B). (Chen, Y.) u. a.., 2021)
2. Feine Kartierung
Durch die Anwendung einer dualen Strategie aus kartengestütztem Klonen und BSA nutzte die Studie 163 F2-Individuen und neun polymorphe Marker, um die Mutation vorläufig auf einen Bereich von 20,0 cM bis 30,8 cM auf Chromosom 1 (~2,3 Mb) zu kartieren. Weitere Markerentwicklungen und zusätzliche Kartierungen verengten den Bereich auf etwa 124 kb, der 21 Kandidatengene umfasst. Hochdurchsatz-Sequenzierung von gepooltem DNA-Material von 30 Wildtyp- und 30 uft-Phänotyp-Individuen sowie dem WD1-Elternteil unter Verwendung der MutMap+-Strategie identifizierte vier Kandidaten-SNPs innerhalb des Intervalls. SNP6241389 wurde durch weitere Analysen als der signifikante Marker bestimmt.
Abbildung 2Feinabstimmungsergebnisse der uft Mutation. (Chen, Y. u. a.., 2021)
3. Funktion des Kandidatengens, Expressionsniveaus und subzelluläre Lokalisation
Die Mutation führt zu einem vorzeitigen Stopcodon, das das normale Protein um 300 Aminosäuren am C-Terminus verkürzt. Die phylogenetische Analyse, die fünf UFO- und dreizehn zusätzliche MADS-Box-Proteinsequenzen einbezieht, unterstreicht die Erhaltung von UFO über Arten innerhalb derselben Familie. Die qRT-PCR-Analyse zeigte eine hohe Expression von CsUFO in den Sprossspitzen der Wildtypen, mit einer signifikanten Herunterregulierung im uft-Mutanten (Abbildung 3).
Abbildung 3Struktur, Erhaltung und Expressionsanalyse des Kandidatengens CsUFO. (Chen, Y. u. a.., 2021)
Wenn Sie mehr über BSA-Anwendungen erfahren möchten, können Sie auf den Artikel "Anwendungen der Bulk-Segregant-Analyse in der Pflanzenforschung."
Die Bulked Segregant Analyse ist eine etablierte Methodik, die die Analyse gepoolter DNA-Proben von Individuen umfasst, die extreme Merkmale innerhalb einer Population aufweisen. Durch die Untersuchung der Unterschiede in der Allelfrequenz zwischen diesen Pools können Forscher effektiv Loci kartieren, die mit spezifischen Merkmalen im gesamten Genom assoziiert sind. Der Anwendungsbereich der BSA hat sich erheblich erweitert, da sie auf eine zunehmend vielfältige Palette von Arten angewendet wird und zu einem wachsenden Fundus an veröffentlichten Forschungsarbeiten führt. Sie ist zu einem Standardwerkzeug im Bereich der molekularen Genetik und Züchtung geworden.
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