CpG-Inseln sind spezialisierte Regionen im Genom, die häufig mit Dinukleotiden "CG" angereichert sind und insbesondere in den Promotorregionen vieler Gene vorkommen, insbesondere bei solchen, die mit grundlegenden Funktionen assoziiert sind. Diese CpG-Stellen spielen eine entscheidende Rolle bei der Rekrutierung von Transkriptionsfaktoren und beeinflussen die Genexpression. Der erhöhte Methylierungsstatus von CpG-Inseln moduliert weiter die Rekrutierung von Transkriptionsfaktoren und hat somit Auswirkungen auf die Genregulation. Im Kontext der DNA-Methylierung bei Säugetieren überwiegt die CG-artige Methylierung, und CpG-Stellen, die reich an CpG-Dinukleotiden sind, befinden sich häufig in der Nähe von transkriptionalen Regulierungsregionen. Bemerkenswerterweise sind diese CpG-Inseln mit etwa 56 % der kodierenden Gene im menschlichen Genom verbunden, was die herausragende Bedeutung der Untersuchung ihres Methylierungsstatus im Bereich der Methylierungsforschung unterstreicht.
Die CpG-Dichte, die eng mit den DNA-Methylierungs dynamiken in verschiedenen Geweben verbunden ist, kategorisiert das Genom in fünf Regionen: CpG-Insel (CGI), den Bereich innerhalb von 2 kb stromabwärts der CpG-Insel (CpG-Shore) und die Zone innerhalb von 2 kb sowohl stromaufwärts als auch stromabwärts der CpG-Insel-Shore (CpG-Shelve). Die Methylierungsniveaus jeder Region werden sorgfältig einzeln bewertet.
BS-Seq (Bisulfid-Sequenzierung) hebt sich als die herausragende Methode zur umfassenden genomweiten Methylierungsdetektion hervor. Diese Technik beinhaltet die Umwandlung von unmethylierter Cytosine (C) zu Uracil (U) durch Bisulfidbehandlung. Durch die Integration von Sequenzierung der zweiten Generation und anschließender Analyse ermöglicht BS-Seq eine Hochdurchsatzdetektion von Methylierungsstellen.
Im Bisulfidbehandlungsprozess werden unmethylierte Cytosine in Uracil umgewandelt, während methylierte Cytosine unverändert bleiben. PCR-Primer werden sorgfältig basierend auf der Sequenz der Zielstelle oder des interessierenden Bereichs entworfen. Die amplifizierten Produkte werden verschiedenen Nachweismethoden unterzogen, darunter PCR-Elektrophorese, Sequenzierung, Fluoreszenzquantifizierung und Next-Generation Sequencing (NGS). Die erhaltenen Ergebnisse werden dann analysiert, um methylierte Stellen zu identifizieren und die Häufigkeit der Methylierung zu bestimmen.
Die Verfahrensschritte der BSP-Methode sind wie folgt:
Die ONT (Oxford Nanopore Technologies) Plattform unterscheidet den Methylierungsstatus von Basen, wie 5mC oder 6mA, indem sie die Veränderungen im elektrischen Signal analysiert, während die Base das Nanopore-Mikrowell durchquert.
Nanopore-Sequenzierung zeigt die bemerkenswerte Fähigkeit, direkt methylierte Cytosine, einschließlich derjenigen an CpG-Stellen, zu identifizieren, wodurch die Notwendigkeit einer Bisulfidumwandlung entfällt. Diese Technologie ist besonders gut darin, Methylierungsmuster in hochdichten Clustern, die als CpG-Inseln (CGIs) bekannt sind, zu erkennen.